Establecimiento y multiplicación in vitro de Podocarpus oleifolius D. Don

Mireya Galárraga, Jaime Hidrobo, Norman Soria, Jaime Gía

Resumen


El romerillo (Podocarpus oleifolius D. Don), es la única conífera endémica de Ecuador y está considerada en peligro de extinción. El objetivo de esta investigación fue establecer y multiplicar in vitro P. oleifolius vía organogénesis directa a partir de segmentos apicales de árboles jóvenes cultivados en campo. Para la desinfección se estudiaron cuatro concentraciones de hipoclorito de sodio (NaOCl) (1.0, 1.25, 1.5 y 1.75%) por 10 min y luego etanol al 70% durante 30 s. A las cuatro semanas de cultivo, se cuantificó el número de explantes necrosados, contaminados,viables (supervivencia)y con mortalidad. Además, se determinó el efecto de la concentración de sales MS (50 y 100%) y Bencil Amino Purina (BAP) (0.5 y 1.0 mg l-1). A las cuatro semanas de cultivo se midió la longitud de la yema apical (cm) y se cuantificó el número de yemas brotadas.Para multiplicar in vitro los brotes de romerillo obtenidos, se añadieron al medio de cultivo diferentes concentraciones de BAP y Ácido Indol Butírico (AIB). Se cuantificó el número de brotes formados por explante y se midió la longitud de la yema apical (cm) en tres subcultivos.Con NaOCl al 1.25% se obtuvo el más alto porcentaje de explantes viables con porcentajes bajos de contaminación microbiana y explantes necrosados. El mayor porcentaje de yemas brotadas se obtuvo en los explantes cultivados en los medios de cultivo sin BAP y los valores más altos de longitud de la yema apical en el medio de cultivo MS. Se logró la multiplicación in vitro de P. oleifolius. Sin embargo, los reguladores del crecimiento BAP y AIB a las concentraciones probadas no aumentaron el número de brotes por explante. Este trabajo sirve como pauta para la implementación de un sistema de propagación a gran escala de esta especie vegetal.

Palabras clave: brotes, cultivo de tejidos, reguladores del crecimiento, viabilidad, yema apical


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Referencias


Aliyu O, Awopetu J (2005) In vitro regeneration of hybrid plantlets of cashew (Anacardium occidentale L.) through embryo culture. African Journal of Biotechnology 4(1): 548-553

AMEXBIO (2010) Asociación Mexicana de bioseguridad. [En línea] En: http://seguridadbiologica.blogspot.com/p/asociacion -mexicana-debioseguridad-ac.html. Consultado el 04 de enero del 2013

Ayala A (2011) Establecimiento de cultivo in vitro de molle (Schinus molle L.) a partir de yemas axilares tomadas de plantas madre como una herramienta para la propagación de la especie. Unidad de Espacio Público EPMMOP. Quito. [En línea] En: http://repositorio.espe.edu.ec/handle/21000/4734. Consultado el 01 de Enero del 2013

Borja C, Lasso S (1990) Plantas nativas para la reforestación en el Ecuador. EDUNAII AID. Quito

Cortés A, Chamorro C, Vega A (1990) Cambios en el suelo por la implantación de praderas, coníferas y eucaliptos en un área aledaña al Embalse de Neusa (Páramo de Guerrero). Subdirección Agrológica de Investigaciones. IGAC. Bogotá

Frank D, Finckh M (2009) Impactos de las plantaciones de Pino Oregón sobre la vegetación y el suelo en la zona centro sur de Chile. Historia Natural Chilena, HNT. Santiago de Chile

García F, Alvarez A, Rodríguez G, Corona L (2008) Germinación in vitro de semillas de Nolina parviflora (H.B.K.) Hemsl. Foresta Veracruzana 10 (2): 23-27

George E F, Hall M A, De Klerk G (2008) Plant Propagation by Tissue Culture. 3rd Edition. Springer. Dordrecht

Grez R (1998) Nódulos radiculares en coníferas chilenas. Instituto de Silvicultura, UACH. Santiago de Chile

Gutiérrez H, De La Vara R, Cano A, Osorio M (2008) Análisis y diseño de experimentos (2° edición). Mc Graw-Hill. México DF

Hartmann H, Kester D (1997) Propagación de plantas. Capítulo 16. Principios de Cultivo de Tejidos para la

Micropropagación. Compañía Editorial Continental S.A. México D. F.

Jara L, Ordoñez G (2000) Manejo de semillas y viveros forestales. DMQ. Quito

Lojan L (1992) El verdor de los Andes. Árboles y arbustos nativos para el desarrollo forestal alto andino. Proyecto forestal participativo en los andes. UNT. Texas

Reporter G (2008) Parque Nacional Podocarpus. UNL. [En línea] En: http://www.global-reporter.net/spamosch/themen/podocarpus.html . Consultado el 17 de Febrero del 2013

Salazar E, Romero C (1996) Cultivo in vitro de segmentos de hojas de ajonjolí (Sesamum indicum L.). Departamento de Biotecnología. Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias. Venezuela. Instituto Universitario de Tecnología del Yaracuy. San Felipe

Shrivastava S, Banerjee M (2008) In vitro clonal propagatiton of physic nut (Jatropha curcas L.). A Journal for Biology Beyond Borders 15(2): 7-11

Sudripta D, Timir B, Simuta J (1996) In vitro propagation of cashewnut. Plant Cell Tissue and Organ Culture 31(2): 615-619

Valdés A, Centeno L, Fernández B (2004) Age-related changes in the hormonal status of Pinus radiata needle fascicle meristems. American Society and Plant Physiology 141(2): 919-962




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