Manejo de hijos y ápices de cultivares de Musa spp. para iniciar la micropropagación y comportamiento durante seis subcultivos in vitro

Pedro Orellana Pérez, Lourdes García, Idalmis Bermúdez, Novisel Veitía, Carlos Romero

Resumen


Se evaluaron dos formas de manejo de los hijos de donde para extraer los ápices que se implantaron in vitro. Se encontró que el método de plantar los pequeños cormos en los Canteros Tecnificados (CT), para provocar el rebrote de la yema apical y su desarrollo sobre un suelo desinfectado, favoreció la supervivencia in vitro, redujo notablemente el número de ápices contaminados y el tiempo requerido para su establecimiento con respecto a la implantación directamente con material de campo. Cuando se implantaron ápices completos resultó ser donde mayor número de estos lograron establecerse (78%), a la vez que alcanzaron el mejor desarrollo y coloración verde. Los cultivares más estables en la multiplicación durante el inicio del proceso de la micropropagación fueron el banano híbrido ‘FHIA 01’ y el plátano híbrido ‘FHIA 20’’, sin embargo, este último presentó el menor coeficiente de multiplicación entre todos los cultivares por lo cual produjo la menor cantidad de brotes acumulados en seis subcultivos. El mayor coeficiente de multiplicación fue alcanzado por el banano híbrido ‘FHIA 23’, el cual produjo el mayor números brotes acumulados aun presentando una notable variabilidad entre subcultivos (CV = 39,9%). Los cultivares de banano no presentaron diferencias entre sí, y su coeficiente de multiplicación fue mayor que para todos los cultivares de plátano, con excepción de ‘FHIA 04’.

Palabras clave: coeficiente, fenolización, híbridos, manejo in vitro, plátanos


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


del Grado Académico de Maestro en Ciencia en Biotecnología Vegetal. Instituto de Biotecnología de Las Plantas. Cuba. P. 64

Banerjee N, Vuylsteke D y De Langhe E A L (1986) Meristem tip culture of Musa: histomorphological studies of shoot bud proliferation. En: L A Withers y P G Alderson (Eds), Plant Tissue Culture and its Agricultural Applications. Kluwer Academic Publishers. pp. 359-370. Dordrecht

Hu C y Wang P J (1983). Meristem Shoot tip and bud culture. En: Evans, D A (Ed.), Handbook of Plant Cell Culture techniques for propagation and breeding. MacMillan. New York pp. 177-277

Jiménez E, (1998) Cultivo de ápices y meristemos. En: Pérez, J P (Ed.). Propagación y Mejora Genética de plantas por Biotecnología. Instituto de Biotecnología de Las Plantas. Cuba. Editora GEO. pp.45-56. La Habana

Murashige, T y Skoog R (1962) A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Plant Physiol. 15:473-493

Orellana, PA (1995) Tecnología para la micropropagación in vitro de clones de Musa spp. Tesis de Doctorado. IBP-Facultad de Ciencias Agropecuarias, UCLV, Santa Clara, Villa Clara, Cuba

Pérez, J y Reyes, C G(1987). Trabajo de Diploma. Curso 1986-1987. Facultad de Ciencias Agropecuarias, UCLV. P. 40

Ramírez D A (1995) Estudio del comportamiento in vitro del clon de banano (Musa spp) FHIA 01 (AAAB). Tesis de Diploma. Universidad Central de Las Villas. Cuba. p. 52

Sandoval F J A y Muller L (1992) Influencia del tamaño de explante en la propagación in vitro de cuatro cultivares de Musa. TURRIALBA (CRI) 42 (21): 243-248

Daniels D D (1999). Micropropagación del Clon de Plátano, Híbrido FHIA-21 (AAAB) y sus somaclones. Tesis en opción

Vuylsteke, D y De Langhe, E A L (1985) Tropical Agriculture. Trinidad. 22: 49-57




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal
está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.