Determinación de las concentraciones adecuadas de 2,4-D y 6-BAP para la inducción de callos morfogénicos de boniato

Orlando S. González Paneque, Isabel Milanés Vega, Juan J. Silva Pupo, Angel Espinosa Reyes, Leonardo Acosta Pompa

Resumen


Raíces tuberosas de los clones Inivit B 90-1 y Yabú-8, fueron trasladadas al laboratorio y colocadas en frascos con agua; seleccionando de los brotes emitidos explantes de limbos foliares. Los mismos fueron desinfectados con Hipoclorito de Sodio (Na OCl) al 1% y sembrados en el medio de cultivo de Murashige y Skoog que contenía diferentes concentraciones de 2,4-D independiente en el medio de cultivo y combinado con 6-BAP. Los cultivos fueron incubados en condiciones de luz solar y evaluados a las cuatro semanas. Los mejores resultados en la inducción de callos morfogénicos con características de color crema amarillentos, nodulares y friables; se obtuvieron con las concentraciones de 2,4-D (0.1 mg.l-1) independiente y 2,4-D (0.1 mg.l-1) combinado con 6-BAP (0.2 mg.l-1) en el medio de cultivo.

Palabras clave: clon, explantes, Ipomoea, tubérculos


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Bidwel, RG (1979) Fisiología Vegetal. Primera Edición en Español, P. 784

Cantliffe, DJ (1993) Advanced Propagation Systems for Biomass Species: A model system based on Sweet Potato. Biomass and Bioenergy 5 (1): 63-69

Carswell, G (1981) Regeneration of sweet potato (Ipomoea batatas Lam.). MS Tesis Universidad de Illinois, Urbana-Champaing, p. 188

FAO (1995) Biotecnología Apropiable: Racionalidad de su desarrollo y aplicaciones en América Latina y el Caribe. Red de Cooperación técnica en biotecnología Vegetal, p. 81, Santiago de Chile

Gamborg, OL (1984) Plant cells cultures; nutrition and media. Cell Culture and Somatic Cell Genetic of Plants, I. Laboratory procedures and their applications, pp. 19-26

Gómez, KR (1998) Cultivo de células y tejidos. En: Pérez Ponce JN (Ed) Propagación y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. Cap. 2, Vol. 1, pp. 25.44, IBP, Santa Clara

Kende, H, Zeevar JA (1997) The five “classical” plant hormonals. Plant Cell, 9: 1197-1210

López, PCr (1990) Establecimiento de un laboratorio de cultivo de tejidos. En: Villalobos VM (Ed) Fundamentos Teórico-Prácticos del cultivo de tejidos vegetales, pp. 15-19, FAO (105)

Margara, J (1988) Preparación y composición de los medios nutritivos. Multiplicación Vegetativa y Cultivo in vitro. Los Meristemos y la Organogénesis, pp. 49-115, INRA, Madrid

Molina, L, Escalona M, Rodríguez R y Jihad A (2003) Efecto de la luz en el cultivo fotomixotrófico de la Piña (Ananas comosus (L.) Merr.) en Biorreactores de Inmersión Temporal. Memorias del Taller Internacional de Biotecnología Vegetal (BioVeg 2003). Centro de Biotecnología de las Plantas (Bioplantas). Ciego de Ávila, Cuba

Murashige, T (1992) Uso del cultivo de anteras en el mejoramiento genético del arroz. Paper present in the International Workshop of Anther Culture for Rice Breeders, pp. 205-303

Murashige, T y Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plantar 15: 473-497

Narvaez, J (1983) Cultivo de tejidos de arroz. Inducción de plantas, pp. 26-34, CIAT, Bogotá

Parrot, W (2002) La Embriogénesis somática en las angiospermas. Conferencia VI simposio Internacional de Biotecnología Vegetal. Libro Resúmenes. Instituto de Biotecnología de las Plantas, pp. 7-17. Santa Clara, Cuba

Pierik, RL (1990) Cultivo in vitro de las plantas superiores. Mundi-Prensa, pp. 49-113, Madrid

Piferrer, AE, Rosales Y y Reyes Z (2001) Descripción morfohistológica de la callogénesis en Piña cabezona (Ananas comosus (L.) Merr.). Resúmenes del Taller Internacional de Biotecnología Vegetal (BioVeg 2003). p. 119. Ciego de Ávila

Roca, WM y Mroginsky LA (1993) Establecimiento de un laboratorio para el cultivo de tejidos vegetales. Principios básicos, metodologías y técnicas del cultivo de tejidos vegetales. En: Roca W y Mroginsky LA (Eds) Cultivo de tejidos en la Agricultura. Fundamentos y Aplicaciones. Parte A, Cap. 1, CIAT, pp. 1-18, Cali

Salinas, R, Gutiérrez A, Álvarez R y Dodds JH (1991) Análisis del desarrollo de embriones somáticos en Camote (Ipomoea batatas (L.) Lam.). Boletín Científico No. 2, pp. 4-12, Colombia

Salinas, R, Gutiérrez A, Álvarez R y Dodds JH (1991a) I regeneración de plantas a partir de embriones somáticos de Camote (Ipomoea batatas (L.) Lam.). Boletín Científico, ACEVIV, Vol. 3, No. 3, p. 8, Colombia.

Santana, NB (1982) Determinación de un medio adecuado para la obtención de callos en variedades de caña de azúcar (Saccharum spp) in vitro. Cultivos Tropicales. 4 (3): 48-52

Szabados, L, Núñez V, Tello L, Mafla G, Roa J y Roca W (1993) Agentes gelificantes en el cultivo de tejidos. En: Roca W y Mroginski L (Eds) Cultivo de tejidos en la Agricultura. Fundamentos y Aplicaciones. Cap. 4, pp. 80-93. CIAT, Cali.




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.