Conservación in vitro de clones de boniato en condiciones de crecimiento mínimo
Resumen
Segmentos nodales de plantas in vitro de boniato de los clones INIVIT B-88, CEMSA 78-354, INIVIT B-90-510 y Cautillo fueron conservados durante un año en medio de cultivo con 10.0 mg.l-1 de ácido abscísico con altos porcentajes de supervivencia y recuperación. La reducción de la temperatura de conservación a 17 ± 2ºC disminuyó la velocidad de crecimiento en todos los clones estudiados y permitió su conservación durante un año manteniendo altos porcentajes de supervivencia. La disminución de la concentración de las sales del medio de cultivo hasta un 50% no redujo significativamente la velocidad de crecimiento con respecto al medio de cultivo control, no pudiéndose conservar los clones evaluados por un tiempo superior a los seis meses en estas condiciones.
Palabras clave: biodiversidad, conservación, Ipomoea batatas, recursos fitogenéticos
Referencias
Banerjee, N y De Langue E (1985) A tissue cultures technique for rapid clonal propagation and storage under minimal growth conditions of Musa (Banana and plantain). Plant Cell Report 4: 351-354
Debabrata, S y Naik, PS (1998) Factors affecting minimal growth conservation of potato microplants in vitro. Euphytica 102 (2): 275-280
Desamero, NV (1990 ) Minimal growth storage for in vitro germplasm conservation of sweet potato ( Ipomoea batatas (L.) Lam.). Ph D Thesis Clemson University Press. Cambridge
Dodds, JH y Roberts LW (1985) Experiments to plant tissue culture. 2nd ed. Cambridge University Press
Espinosa, A, Salas L, González O y Silva J (2002) Empleo de ácido abscísico, manitol y la disminución de las sales del medio de cultivo en la conservación in vitro de Ipomoea batatas. Biotecnología Vegetal 2 (1): 49-42
García, L, Rodríguez M, Martínez Y, Sarría B y Pichardo T (1999) Aplicación de la Biotecnología en la conservación de los recursos fitogenéticos de la caña de azúcar (Saccharum spp. híbrido). Libro de Reportes Cortos. V Coloquio Internacional de Biotecnología Vegetal. IBP. Villa Clara
Jarret, RL y Gawell N (1991) Abscisic acid-induced growth inhibition of sweet potato (Ipomoea batatas L.) in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 24: 13-18
Jarret, RL y Gawell, N (1991 a) Chemical and environmental growth regulation of sweet potato (Ipomoea batatas (L.) Lam.) in vitro. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 25: 153-159
Jarret, RL (1991) Cultivo de Tejidos de Camote. Publicaciones CIAT. Colombia. 20 p. Cali
Mandall, BB y Chandel KPS (1996) Conservation of genetic diversity in sweet potato and yams using in vitro strategies. En: Mandall BB (Eds) Tropical Tuber Crops: problems, prospect and future strategies. pp. 49-54. Sciencie Publishers Inc.
Marino, G, Paskuale R y Fabrizio S (1985) Storage of in vitro culture of Prunus root-stocks. Plant Cell Tissue and Organ Culture 5: 73-78
Monette, PL (1988) Grapevine (Vitis vinifera L.) En: Bajaj, YPS (Eds) Biotechnology in Agriculture and Forestry, Vol. 6 pp. 3-37. Springer Verlag
Withers, LA (1982) Institute working on tissue culture for genetic conservation. A revised list. IBPGR Secretariat. Rome
Mroginski, LA y Scocchi AM (1998) Conservación de germoplasma de Paraíso (Melia azedarach) mediante cultivo de meristemos. Libro de resúmenes. III Encuentro Latinoamericano de Biotecnología Vegetal. Palacio de las Convenciones. Ciudad de La Habana
Murashige, T y Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 15: 473-497
Peacock, WJ (1986) The impact of Molecular Biology on Genetics Resources. En: Holden, JHW y Williams JT (Eds) Crop Genetic Resources: Conservation and Evaluation, pp. 268-276. George Allen and Unwind, London
Roca, WM, Bryan J y Roca MR (1979) Tissue culture for international transfer of potato genetic resources. Am. Potato Journal 56 (1) 1-10
Towill, LE (1981) Solanum tuberosum: a model for studying the cryobiology of shoot tips in the tuber bearing Solanum species. Plant Sci. Lett. 20: 315-324
Roca, WM, Arias DL y Chávez R (1993) Métodos de conservación in vitro de germoplasma. En: Roca WM. Cultivo de Tejidos en la Agricultura; Fundamento y Aplicaciones, pp. 697-727. CIAT. Cali
Rodríguez, S, García M, Milián M y Sánchez I (1996) Establishment and use under field condition of Cubans germplasm of tropical root and tuber crops, and banana plantain. En: Management of field and in vitro germplasm collection. Proceeding of a consultation meeting. 15-20 January. IPGRI. Rome. Italy
Suksa- Ard P, Kataoka I, Fujime Y Subhadrabandhu S (1997) Effect of temperature, growth retardant and osmotic potential on growth of papaya shoots conserved in vitro. Japanese Journal of Tropical Agriculture 41 (1): 7-13
Vázquez, TE (2001) Hormonas Vegetales En: Vázquez TE y Torres S (ed) Fisiología Vegetal. pp 366. La Habana.
Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal
Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.