Ocultar
Mostrar todos
Determinación de la concentración mínima letal de glufosinato de amonio en diferentes materiales vegetales de banano cv. ‘Grande naine’ (Musa AAA)
Resumen
La mejora genética de bananos mediante transformación genética requiere de un sistema de selección eficiente. Uno de los marcadores de selección más utilizados es el gen bar de Streptomyces hygroscopicus, el cual codifica para la fosfinotricin acetil transferasa y confiere resistencia a la fosfinotricina y al glufosinato de amonio. Estos son ingredientes activos en varios herbicidas comerciales como el Basta®, Finale® y Liberty®. La presente investigación tuvo como objetivo determinar la concentración mínima letal de glufosinato de amonio (Finale®) sobre agregados celulares embriogénicos, brotes cultivados in vitro y plantas cultivadas en casa de cultivo de banano cv. ‘Grande naine’ (Musa AAA). Se utilizaron diferentes concentraciones de este herbicida en el cultivo de agregados celulares embriogénicos (5.0, 10.0, 15.0, 20.0, 25.0 mg l-1), brotes cultivados in vitro (0, 1.0, 1.5, 2.0, 3.0, 4.0 mg l-1) y fue aplicado al follaje de plantas en casa de cultivo (0, 5.0, 10.0, 20.0, 30.0, 40.0 g l-1). Se determinó que la concentración mínima letal en agregados celulares embriogénicos fue 20.0 mg l-1, en brotes in vitro de 3.0 mg l-1 y en plantas en casa de cultivo 30.0 g l-1 de glufosinato de amonio. Los resultados demostraron que es posible utilizar el glufosinato de amonio como agente selectivo de transformantes que porten el gen bar.
Palabras clave: agente selectivo, Finale®, cultivo de tejidos, transformación genética
Referencias
Andow DA and Zwahlen C (2006) Assessing environmental risks of transgenic plants. Ecology Letters 9: 196–214
Bayer CropScience (2005) Technical information Glufosinate-ammonium. CropScience.
Beck E, Ludwig A, Anerswald E, Reiss B, Achaller H (1982) Nucleotide sequence and exact localisation of the neomycin phosphotransferase gene from transposon Tn 5. Gene 19: 327-336
Becker D, Dugdale B, Smith M, Harding R, Dale J (2000) Genetic transformation of Cavendish banana (Musa spp. AAA group) cv. ‘Grande naine’ via microprojectile bombardment. Plant Cell Report 19: 229-234
Bermúdez-Caraballoso I, Kosky RG, Reyes M, Chong-Pérez B (2006) Determinación de la dosis letal mínima de fosfinotricina para la selección de transformantes de banano cv. ‘Grande naine’ (Musa AAA). Biotecnología vegetal 6 (3): 32-36
Bevan M, Flavell RB, Chilton MD (1983) A chimeric antibiotic resistance gene as a selectable marker for plant cell transformation. Nature 394: 184-187
Bieberach C (1995) Embriogénesis somática y regeneración de plantas en cultivares de Musa spp. Tesis para optar al grado de Magister Scientiae. CATIE, Turrialba, Costa Rica
Busot GG, Kosky RG, Reyes M, de la Riva G, Más L, Vázquez R (1999) Expresión del gen uidA en suspensiones celulares de banano (Musa AAA cv. Gran Enano) empleando Agrobacterium tumefaciens, pp. 228-230. Reportes cortos 5to Coloquio Internacional de Biotecnología Vegetal. IBP. Junio 16-19 de 1999. Cuba
Daniell H, Muthukumar B, Lee SB (2001) Marker free transgenic plants: engineering the chloroplast genome without the use of antibiotic selection. Curr Genet 39: 109-116
Daniels DD (2003) Desarrollo de la embriogénesis somática y su empleo en la transformación genética por Biobalística en el cultivar híbrido de plátano ‘FHIA-21’ (Musa spp. AAAB). Tesis, de Doctorado. Instituto de Biotecnología de las Plantas, UCLV. Santa Clara. Cuba
Darbani B, Eimanifar A, Neal C, Camargo W (2007) Methods to produce marker-free transgenic plants. Biotechnol J. 2: 83-90
De Block M, Boterman J, Vandewiele M, Van Montagu M, Leemans J (1987) Engineering herbicide resistance in plants by expression of a detoxifying enzyme. EMBO J. 6: 2513-2518
Ganapathi TR, Higgs NS, Balint-Kurti PJ, Artzen CJ, May GD, Van Eck JM (2001) Agrobacterium-mediated transformation of embryogenic cell suspension of the banana cultivar Rasthali (AAB). Plant Cell Report 20: 157-162
García E C, Villarroel C, Oropeza M (2004) Progress on plantain (Musa AAB cv. Hartón) transgenesis: Transformation for resistance to herbicide BASTA. Rev. Fac. Agron. (LUZ l 1: 8-14
García EA, Mejías TE, Vargas A R (2004) Morfoanatomical and molecular aspects of in vitro infection of plantain cv. Harton, by the fungus Mycoshaerella fijiensis Morelet. XVI Reunión Internacional ACORBAT, 26 de septiembre al 1ro de octubre de 2004. Oaxaca. México
Kosky RG, Escalant JV, Reyes MV, Posada-Pérez L, Freire-Seijo M (1999) Embriogénesis somática em medio líquido en el cv. Gran Enano (Musa AAA). CORBANA 25 (52): 143-154
Kosky RG, De Feria M, Posada-Pérez L, Gilliard T, Martínez FB, Reyes M, Chávez M, Quiala E (2002) Somatic embryogenesis of the banana hybrid cultivar FHIA-18 (AAAB) in liquid medium and scaled-up in a bioreactor. Plant Cell Tissue Organ Culture 68: 21-26
Hadi MZ, Kemper E, Wendeler E, Reiss B (2002) Simple and versatile selection of Arabidopsis transformants. Plant Cell Reports 21: 130-135
Hails S R, Morley K (2005) Genes invading new populations: a risk assessment perspective. Trends in Ecology & Evolution 20 (5): 245-252
Herrera-Estrella L, De Block M, Messens E, Hernalsteen JP, Van Montagne M, Schell J (1983) Chimeric genes as dominant selectable markers in plant cells. EMBO J. 2: 987-995
Khanna H, Becker D, Kleidon J, Dale J (2004) Centrifugation assisted Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation (CAAT) of embryogenic cell suspensions of banana (Musa spp. Cavendish AAA and Lady Finger AAB). Molecular Breeding 14: 239-252
Labrada R, Panker C, Caseley J (1996) Manejo de malezas para países en desarrollo (Estudio FAO Producción y Protección Vegetal –120). FAO. Roma
Matsumoto K, Cunha NB, Morais LS, Aragao FJL (2005) Instability of transgenes in in vitro-maintained banana plants. Acta Hort. 738: 529-533
Miki B, McHugo S (2004) Selectable marker genes in transgenic plants: applications, alternatives and biosafety. J . Biotech. 107: 193–232
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 15: 473-497
Orellana P (1994) Tecnología para la micropropagación in vitro de clones de Musa spp. Tesis de Doctorado. UCLV. IBP. Santa Clara. Cuba
Parveez GKA, Chowdhury MKU, Saleh NM (1996) Determination of minimal inhibitory concentration of selection agents for oil palm (Elaeis guineensis Jacq.) Transformation Asia Pac. J. Mol. Biotechnol. 4: 219-228
Remy S, Thiry E, Coemans B, Windelinckx S, Swennen R, Sagi L (2005) Improved T-DNA vector for tagging plant promoters via high-throughput luciferase screening. BioTechniques 38: 763-770
Sagi L, Remy S, Panis B, Swennen R, Volckaert G (1994) Transient gene expression in electroporated banana (Musa spp., cultivar ‘Bluggoe’, ABB group) protoplast isolated from regenerable embryogenic cell suspension. Plant Cell Reports 13: 262-266
Sagi L, Panis B, Remy S, Schoofs H, De Smet K, Swennen R, Cammue BP (1995) Genetic transformation of banana and plantain (Musa) via particle bombardment. Biotechnology 13: 481-485
Shu Q Y, Liu GS, Xu SX, Li XF, Li HJ (2005) Genetic transformation of Leymus chinensis with the PAT gene through microprojectile bombardment to improve resistance to the herbicide BASTA. Plant Cell Rep. 24: 36-44
Sreeramanan S, Maziah M, Abdullah MP, Rosli NM, Xavier R (2006) Potential selectable marker for genetic transformation in banana. Biotechnology 5 (2): 189-197
Steward CN, Halfhill MD, Warwick SI (2003) Transgene introgression from genetically modified crops to their wild relatives. Nature Rev. Genet. 4: 806-817
Toki S, Takamatsu S, Nojiri CH, Ooba S, Anzai H, Iwata M, Chriristensen AH, Quail PH, Uchimiya H (1992) Expression of a maize Ubiquitin gene promoter-bar chimeric gene in transgenic rice plants. Plant Physiol. 100: 1503-1507
Triparthi L, Triparthi JN, Hughes JDA (2005) Agrobacterium –mediated transformation of plantain (Musa sp.) cv. Agbagba. African Journal of Biotechnology 4(12): 1378-1383
Waldrom C, Murphy EB, Roberts JL, Gustafson GD, Arnour SL, Malcolm SK (1985) Resistance to hygromicin B: a new marker for plant transformation studies. Plant Mol Biol. 5: 103-108
Yoon ES, Jeong JH, Choj YE (2002) Recovery of BASTA resistant Sedum erythrostichum via Agrobacterium tumefaciens mediated transformation. Plant Cell Rep. 21: 70-75
Zapiola L M, Campbell C K, Butler D M, Mallory-Smith CA (2007) Escape and establishment of transgenic glyphosate-resistant creeping bentgrass Agrostis stolonifera in Oregon, USA: a 4-year study. Journal of Applied Ecology 45 (2): 486-494
Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal
Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.