Establecimiento in vitro de Morera

B J E Salas, Daniel Agramonte, Raúl Barbón, Felipe Jiménez-Terry, Raúl Collado, Marta Pérez, Odalys Gutiérrez, Daimy Ramírez

Resumen


Se utilizaron yemas apicales como explantes los cuales fueron establecidos en el medio de cultivo propuesto por Murashige y Skoog. En la desinfección se utilizó Hipoclorito de Sodio al 0.5, 1.0 y 1.5% durante 10, 15 y 20 minutos y la combinación de Hipoclorito de Sodio y etanol al 70%. Se determinó el porcentaje de contaminación microbiana y de supervivencia. En el establecimiento in vitro se evalúo la Influencia del 6-BAP y la kinetina en concentraciones de 0.5, 1.0 y 2.0 mg l-1 en cada una de ellas, tanto en medio de cultivo semisólido como líquido y se evaluaron los porcentajes de explantes brotados y de supervivencia así como la longitud de los brotes (cm). Con la combinación de Hipoclorito de Sodio al 1% y etanol al 70% (p<0.05) se redujo a 0.9% la contaminación microbiana y se mejoró la supervivencia de los explantes hasta 98.4%. En el establecimiento in vitro se observaron los mejores resultados con 6-BAP comparado con kinetina y el mejor tratamiento fue al utilizar 0.5 mg l-1 de 6-BAP con el cual se obtuvo el 97.4 y 98.2% de los explantes brotados en el medio de cultivo semisólido y líquido respectivamente con diferencias estadísticas (p<0.05) con los demás tratamientos. De la misma manera para la variable longitud de brotes la cual fue de 4.91 y 5.06 cm y el valor más bajo de 2.42 y 2.8 cm se observó en el control.

Palabras clave: citoquinina, brotación, Morus alba L, yemas apicales


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Referencias


Alvarado, C Y (1998) Contaminación microbiana en el cultivo in vitro de plantas. En: Pérez Ponce, PJ (ed.). Propagación y mejora genética de plantas por Biotecnología. pp. 81-104. Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central “Marta Abreu” las Villas. Santa Clara.

Ashmore, S E y Engelman, E (1997) Status report on the development and application of in vitro techniques for the conservation and use of plant genetics resources. IPGRI. p67 Roma.

Benvides, JE (2000) La morera, un forraje de alto valor nutricional para la alimentación animal en el trópico. Pastos y Forrajes. Revista de la Estación de Pastos y Forrajes “Indio Hatuey”. 23: 1-14

Benvides, JE, Borel, R y Esnaola MA (1986) Evaluación de la producción de forraje del árbol de morera (Morus sp.) sometido a diferentes frecuencias y alturas de corte. Resumen de las investigaciones realizadas en rumiantes menores, cabras y ovejas en el proyecto de Sistemas de Producción Animal. Serie Técnica. Informe Técnico No. 67. p. 74.CATIE. Turrialba

Cassells, AC (1991) Problems in tissue culture. Culture contamination. En: Debergh PC y RH Zimmerman (eds.). Micropropagation. pp. 31-45. Kluwer Academic Publishers. Dorchrecht

García, M, Prieto M, Lugo, Y,Miliam, L y Cepero L (2002) Estudios preeliminares sobre micropropagación de Morus alba. Una nueva contribución para el ecosistema ganadero. Estación Experimental de Pastos y Forrajes “Indio Hatuey”. http:lead.virtualcentre.org/es/enl/ BTJ%20Taller/garciamayneivis.htm

Hu, CV y Wang, JP (1983) Meristem, shoot tip and bud culture. En: Evans, DA, Ammirato, PV y Yameda, Y (eds.). Handbook of plant cell culture. 1,pp.177-227. McMillan Publishing. New York

Jiménez, E (1998) Cultivo de ápices y meristemos. En: Pérez Ponce JN (Ed.). Propagación y mejora genética de plantas por Biotecnología, pp. 45-56. Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central de las Villas, Santa Clara

Leifert, C, Morris, CE y Waites, WM (1994) Ecology of microbial sacrophytes and pathogens in tissue culture and field grown plants: reason for contamination problems in vitro. Critical Reviews in Plant Science 13: 139-183

Ma, F, Guo, C, Liu, Y, Li, M, Ma, T, Mei, L y Hsiao, AI (1996) In vitro shoot apex grafting of mulberry (Morus alba L.). Horticultural Science 31: 460-462

Menard, D, Coumans-Guilles, MF, Leclercq, N y Gaspar, T (1985) A technique of micropropagation aplicable to small fruiting trees. Biotechnology Abstract 50: 333-335

Murashige, T y Skoog, FS (1962) A revised medium for rapid growth and biossays with tobacco tissue culture. Plant Physiology 15: 173-197

Sánchez, MD (2002) Mulberry: an exceptional forage available almost worldwide. En: Sánchez, MD (ed.). Mulberry for animal production. Paper 147, pp. 161-172. Animal Production and Health Division. FAO. Roma

Sahoo, Y, Pattnaik, SK, y Chand, PK (1993) Micropropagation of mulberry using alginate encapsulated shoot buds. In vitro cellular and Developmental Biology 29(3): 90 A

Sanginés, GJR, Lara, LPE, Rivera, LJA, Pinzón, LL, Ramos, TO, Murillo, J, Itra, M, Fuentes, CC y Azcorra, G (1999) Avances en los programas de investigación en morera (Morus alba L.) en Yucatán. I Congreso Internacional sobre Morera. Estación Experimental de Pastos y Forrajes “Indio Hatuey”. Matanzas.

Soo-Ho, L, Younr-Taek, K, Sang-Pong, L, In-Jun, R, Jung-Sung, L y Byung-Ho, L (1990) Sericulture training manual. FAO. Agricultural Services Bulletin No. 80. 117 p. Roma

Vázquez, VE y Torres, S (1980) Fisiología Vegetal. Crecimiento y desarrollo. pp. 317-372. Ed. Pueblo y Educación. Ciudad de la Habana

Vijaya-Chitra, DS y Padmaja, G (2002). Seasonal influence on axilary bud sprouting and micropropagation of elite cultivars of mulberry. Scientia Horticulturae 92: 55-68




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