Multiplicación in vitro de plantas de Pinus caribaea var. caribaea

Manuel de Feria, Maité Chávez, Raúl Barbón, Mariana La O, Marta Pérez, Felipe Jiménez-Terry, Elisa Quiala, Daniel Agramonte

Resumen


En muchas especies de coníferas lograr la regeneración de plantas vía organogénesis a partir de brotes apicales y yemas axilares ha resultado difícil, y el género Pinus no ha sido la excepción, es por ello, que la presente investigación tuvo como objetivo lograr la multiplicación in vitro de plantas de Pinus caribaea var. caribaea a partir de brotes apicales obtenidos de plantas donantes cultivadas en casas de cultivo. Se determinó que en la fase de multiplicación el 6-BAP influyó en el desarrollo de las plantas in vitro y que con la concentración de 6.66 μM se obtuvo el mayor número (6.75) y longitud de los brotes por planta (2.70 cm) y un coeficiente de multiplicación de 2.38. Al comparar el efecto de la luz solar y artificial en el desarrollo de las plantas in vitro se observó que con luz solar las plantas presentaron una mejor respuesta in vitro y un mayor coeficiente de multiplicación. Se demostró que el agente gelificante y su concentración, fueron factores que influyeron en el desarrollo in vitro de las plantas en la fase de multiplicación. Con Gelrite se obtuvieron mejores resultados que con Agar. Con 4.0 g l-1 de Gelrite el coeficiente de multiplicación alcanzó su mayor valor (2.87). Estos resultados demostraron que fue posible multiplicar plantas in vitro de Pinus caribaea var. caribaea a partir de brotes apicales cortados de plantas donantes obtenidas de semillas, lo que permitirá mantener la diversidad biológica de esta variedad y multiplicar nuevos clones.

Palabras clave: agentes gelificantes, pino, reguladores del crecimiento


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Alonso, P, Moncaleán P, Fernández B, Rodríguez A, Centeno ML, Ordás RJ (2006) An improved micropropagation protocol for stone pine (Pinus pinea L.). Ann. For. Sci. 63: 879-885

Bonga JM, Von Aderkas P (1992) In vitro culture of trees. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht

Bonga, JM, Klimaszewska KK, von Aderkas P (2010) Recalcitrance in clonal propagation, in particular of

conifers. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 100: 241-254

Cantillo, R, Rodríguez L, Guadalupe O, Rosales C, Igarza J, Pifferrer A, Ochoa AM (2006a) Obtención in vitro y aclimatización de brotes axilares de la especie Pinus cubensis Griseb. Biotecnología Vegetal 6: 105

Cantillo, R, Rodríguez L, Rosales Y, Guadalupe O (2006b) Germinación in vitro de Pinus cubensis Griseb. [en línea]. Disponible en: http:// www.ciencias.holguin.cu/ 2006/septiembre/articulos/ ARTI3.htm [Consultado el 27 de Abril del 2009]

Coke, JE (1996) Basal nutrient médium for in vitro cultures of loblolly pine. U.S. Pat. No. 0,553,4434 patent. Jul. 9, 1996

De Diego, N, Montalbán IA, Fernández E, Montcaleán P (2008) In vitro regeneration of Pinus pinaster adult trees. Can J For Res 38: 2607–2615

de Feria, M, Chávez M, Barbón R, La O M, Pérez M, Jiménez-Terry F, Quiala E, Agramonte D (2008) Establecimiento in vitro de brotes apicales de Pinus caribaea var. caribaea. Biotecnología Vegetal 1: 15 - 20

Klimaszewska, K, Trontin JF, Becwar MR, Devillard C, Park YS, Lelu MA (2007) Recent Progress in Somatic Embryogenesis of Four Pinus spp. Tree and Forestry Science and Biotechnology 1: 11-25

Kumar, R, Sharma K, Agrawal V (2005) In vitro clonal propagation of Holarrhena antidysenterica (L.) Wall. through nodal explants from mature trees. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant 41: 137-144

Lelu, MA, Michele W y Klimaszewska K (2006) Simplified and improved somatic embryogenesis for clonal propagation of Pinus pinaster (Ait.). Plant Cell Report 25: 767-776

Nehra, NS, Becwar MR, Rottmann WH, Pearson L, Chowdhury K, Chang S, Wilde HD, Kodrzycki RJ, Zhang C, Gause KC, Parks DW, Hinchee MA (2005) Forest biotechnology: innovative methods, emerging opportunities. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant 41: 701-717

Owens, LD, Wozniak CA (1991) Measurement and effects of gel matric potential and expressibility on production of morphogenic callus by cultured sugarbeet leaf discs. Plant Cell Tissue and Organ Culture 26: 127-133

Pullman, GS, Skryabina A (2007) Liquid medium and liquid overlays improve embryogenic tissue initiation in conifers. Plant Cell Report 26: 873-887

Tang, W y Newton RJ (2005) Plant regeneration from callus cultures derived from mature zygotic embryos in white pine (Pinus strobus L.). Plant Cell Report 24: 1-9

Tang, W, Harris LC, Outhavong V, Newton RJ (2004) Antioxidants enhance in vitro plant regeneration by inhibiting the accumulation of peroxidase in Virginia pine (Pinus virginiana Mill.). Plant Cell Report 22: 871-877

Thorpe, T, Stasolla C, Yeung EC, de Klerk GJ, Roberts A, George EF (2008) The Components of Plant Tissue Culture Media II : Organic Additions, Osmotic and pH Effects, and Support Systems. En: George, EF, Hall MA y de Klerk GJ (Eds.) Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition, pp. 115-173. Springer. Dordrecht

van Staden, J, Zazimalova E, George EF (2008) Plant Growth Regulators II: Cytokinins, their Analogues and Antagonists. En: George, EF, Hall MA y de Klerk GJ (Eds.) Plant Propagation by Tissue Culture 3rd Edition, pp. 205-226. Springer. Dordrecht




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.