Organogénesis indirecta en Phaseolus vulgaris L. cv. CIAP 7247

Raúl Collado, Lourdes R. García, Gert Angenon, Dámaris Torres, Carlos Romero, Idalmis Bermúdez-Caraballoso, Novisel Veitía, Miriam Ramírez

Resumen


La principal limitante para la transformación genética de Phaseolus vulgaris L. está relacionada con las dificultades para su regeneración in vitro. Para transformar genéticamente uno de los cultivares de mayor importancia en Cuba se requiere desarrollar previamente un protocolo de regeneración in vitro vía organogénesis indirecta. Es por ello, que este trabajo se realizó con el objetivo de lograr la formación de brotes a partir de callos en Phaseolus vulgaris L. cv. CIAP 7247. Se emplearon como material vegetal semillas maduras cosechadas en una casa de cultivos protegidos. En la formación de callos se determinó el efecto del tipo de explante. Para lograr la formación de brotes a partir de callos, se probaron cuatro concentraciones de 6-bencilaminopurina (0.5, 1.0, 2.0, 2.5 mg.l-1) y un tratamiento control sin reguladores de crecimiento. Transcurridos 45 días de cultivo, se evaluó el número de brotes formados en 0.5g de masa fresca de callo. El mayor porcentaje (86%) de explantes que formaron callo se observó en los cotiledones, seguido por los segmentos de eje embriogénico con nudo cotiledonal (57%) y por los cotiledones con eje embriogénico (38%). Sin embargo, solo se formaron brotes en los callos que crecieron a partir de cotiledones con eje embriogénico. Con la adición de 2.0 mg.l-1 de 6-BAP al medio de cultivo de formación de brotes el número de brotes observados en 0.5 g de callos se incrementó 2.2 veces. Se demostró que el tipo de explante tuvo un efecto determinante en la regeneración.

Palabras clave: brotes, callos nodulares, frijol, transformación genética


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Referencias


Amutha, S, Muruganantham M, Ganapathi A (2006) Thidiazuron-induced high-frequency axilary and adventitious shoot

regenaration in Vigna radiata (L.) Wilczek. In Vitro Cell. Dev. Biol.—Plant 42: 26–30

Arellano, J, Fuentes S I, Castillo-España P, Hernández G (2008) Regeneration of different cultivars of common bean (Phaseolus vulgaris L.) via indirect organogenesis. Plant Cell Tiss Organ Cult 1: 11-18

Cruz de Carvalho, M H C, Le B V, Zuily-Fodil Y, Thi A T P, Kiem T T V (2000) Efficient whole plant regeneration of common bean (Phaseolus vulgaris L.) using Thin-cell-layer culture and silver nitrate. Plant Science 159: 223-232

Dillen, W, De Clercq J, Van Montagu M, Angenon G (1996) Plant regeneration from callus in a range of Phaseolus acutifolius A. Gray genotypes. Plant Sci. 118:81–88

Dillen, W, De Clercq J, Goznes A, Van Montagu M, Angenon G (1997) Agrobacterium-mediated transformation of Phaseolus acutifolius A Gray. Theor. Appl. Genet. 94: 151-158

Gamborg, O L, Miller R A y Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research 50: 151-158

García, L, Pérez J, Torres D, Padrón Y, Romero C (2006) Influencia de reguladores del crecimiento en la formación de callos de Phaseolus vulgaris L cv. CIAP 7247. Biotecnología Vegetal 6 (2): 73-77

Khalafalla, M, Hattori K (1999) A combination of thidiazuron and benzyladenine promotes multiple shoot production from cotyledonary node explants of faba bean (Vicia faba L.). Plant Growth Regulation 27: 145-148

Mohamed, M F, Coyne D P, Read P E (1993) Shoot organogenesis in callus induced from pedicel explants of common bean (Phaseolus vulgaris L.). Journal of the American Society for Horticultural Science 118: 158-162

Murashige, T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. 15: 473-497 Plant Physiol

Murch, S J, Saxena P K (2001) Molecular fate of thidiazuron and its effects on auxin transport in hypocotyls tissues of Pelargonium x hortorum Bailey. Plant Growth regulation 35: 269-275

Zambre, MA, De Clercq J, Vranova E, Van Montagu M, Angenon G, Dillen W (1998) Plant regeneration from embryo-derived callus in Phaseolus vulgaris L. (common bean) and P. acutifolius A. Gray (tepary bean). Plant Cell Reports 17: 626-630

Zambre, M, Chowdhury B, Kuo Y-H, Van Montagu M, Angenon G, Lambein F (2002) Prolific regeneration of fertile plants from green nodular callus induced from meristematic tissues in Lathyrus sativus L. (grass pea). Plant Sci 163:1107–1112

Zambre, M, Geerts P, Maquet A, Van Montagu M, Dillen W, Angenon G (2001) Regeneration of fertile plants from callus in Phaseolus polyanthus Greenman (year bean). Ann Bot 88:371–377

Zambre, M, Goossens A, Cardona C, Van Montagu M, Terryn N, Angenon G (2005) A reproducible genetic transformation system for cultivated Phaseolus acutifolius (tepary bean) and its use to assess the role of arcelins in resistance to the Mexican bean weevil. Theor Appl Genet 110: 914–924




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