Efecto de la frecuencia de inmersión y la disponibilidad de medio de cultivo en la multiplicación del cultivar híbrido FHIA-21 (Musa AAAB) en sistemas de inmersión temporal

Manuel de Feria, Elisa Quiala, Maité Chávez, Lester Molejón, Elizabet Peralta, Marilyn Hernández, Alexis Rodríguez, Deibis Mirabal, Yudith Sánchez

Resumen


El presente trabajo tuvo como objetivos estudiar el efecto de la frecuencia de inmersión y la disponibilidad de medio de cultivo por brote en la multiplicación del cultivar híbrido FHIA-21 con el uso de sistemas de inmersión temporal. Se demostró que es posible multiplicar este material vegetal en sistemas con frascos de cultivo de dos capacidades diferentes y que los resultados que se pueden obtener son superiores a los obtenidos en medio de cultivo semisólido. Con frascos de 1.0 litro de capacidad se logró un coeficiente de multiplicación de 4.95 con cuatro inmersiones al día después de 25 días de cultivo, mientras que los mejores resultados con sistemas de inmersión temporal de 10 litros de capacidad se lograron también con cuatro inmersiones al día, pero con 50 ml de medio de cultivo por brote, con lo cual se alcanzó un total de 370 brotes por sistema de inmersión temporal y un coeficiente de multiplicación de 6.16. Se comprobó que los brotes del cultivar híbrido FHIA-21 puedieron ser multiplicados durante varios subcultivos sucesivos en estos sistemas y no se observó la presencia de brotes hiperhidratados.

Palabras clave: automatización, medio de cultivo líquido, plátano


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Referencias


Aitken–Christie, J (1991) Automation. En: Debergh PC, Zimmerman RJ (Eds) Micropropagation: Technology and Application, pp. 363–388. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht

Albany, N, Vilchez J, Jiménez E, García L, de Feria M, Pérez N, Sarría Z, Pérez B, Clavelo J (2005) Use of growth retardants

for banana (Musa AAA cv. Grand Naine) shoot multiplication En: Hvoslef-Eide AK, Preil W (Eds) Liquid Cultutre Systems

in temporary immersion systems. En: Hvoslef-Eide AK, Preil for in vitro Plant Propagation, pp. 231-242. Springer,

W (Eds) Liquid Cultutre Systems for in vitro Plant Dordrecht Propagation, pp. 213-224. Springer, Dordrecht

Alvard, D, Côte F, Teisson C (1993) Comparison of methods of liquid medium culture for banana micropropagation. Effects of temporary immersion of explants. Plant Cell Tissue and Organ Culture 32: 55–60

Berthouly, M, Dufour M, Alvard D, Carasco C, Alemano L, Teisson C (1995) Coffee micropropagation in a liquid medium using the temporary immersion technique. En: ASIC Publishers (Eds.) 16th International Scientific Colloquium on Coffee, Kyoto, pp. 514-519. Vevey

Berthouly, M, Etienne H (2005) Temporary immersion system: a new concept for use liquid medium in mass propagation. En: Hvoslef-Eide AK y Preil W (Eds) Liquid Cultutre Systems for in vitro Plant Propagation, pp. 165-195. Springer, Dordrecht

Chu, I (1995) Economic analysis of automated micropropagation. En: Aitken-Christie J, Kozai T, Smith MAL (Eds) Automation and Environmental Control in Plant Cell, Tissue Culture, pp. 19-27. Kluwer Academic Publischers, Dordrecht

Debergh, P (1988) Improving mass propagation of in vitro plantlets. En: Kozai, T (Ed) Horticulture in High Tecnology Era, pp. 45-57. International Symposium on High Tecnology in Protected Cultivation, Tokyo

Escalona, M, Lorenzo JC, González B, Daquinta M, González JL, Desjardins Y, Borroto CG (1999) Pineapple (Ananas comosus L. Merr) micropropagation in temporary immersion systems. Plant Cell Report, 18: 743–748

Etienne, H, Berthouly M (2002) Temporary immersion systems in plant micropropagation. Plant Cell Tissue and Organ Culture 69: 215–231

Hempfling, T, Preil W (2005) Application of a temporary immersion system in mass propagation of Phalaenopsis.

Jiménez, E (2005) Mass propagation of tropical crops in temporary immersion systems. En: Hvoslef-Eide AK, Preil W (Eds) Liquid Culture Systems for in vitro Plant Propagation, pp. 197-211. Springer, Dordrecht

Krueger, S, Robacker C, Simonton W (1991) Culture of Amelanchier × grandiflora in a programmable micropropagation apparatus. Plant Cell Tissue and Organ Culture 27: 219–226

Li-Hua Zhu, Xue-Yuan Li, Welander M (2005) Optimisation of growing conditions for the apple rootstock M26 grown in RITA containers using temporary immersion principle. En: Hvoslef-Eide AK, Preil W (Eds) Liquid Cultutre Systems for in vitro Plant Propagation, pp. 253-261. Springer, Dordrecht.

Lorenzo, JC, Gonzalez BL, Escalona M, Teisson C, Espinosa P, Borroto C (1998) Sugarcane shoot formation in an improved temporary immersion system. Plant Cell Tissue and Organ Culture 54: 197–200

Maene, L, Debergh P (1985) Liquid medium additions to established tissue cultures to improve elongation and rooting in vivo. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 5: 23-33

Murashige, T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant 15: 473-497

Wawrosch, A, Kongbangkerd A, Kopf A, Kopp B (2005) Shoot regeneration from nodules of Charybdis sp: A comparison of semisolid, liquid and temporary immersion culture systems. En: Hvoslef-Eide AK, Preil W (Eds) Liquid Cultutre Systems for in vitro Plant Propagation, pp. 275-280. Springer, Dordrecht

Ziv, M, Ronen G, Raviv M (1998) Proliferation of meristematic clusters in disposable presterilized plastic bioreactors for the large-scale micropropagation of plants. In vitro Cell. Dev. Biol.-Plant 34: 152-158




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