Influencia del agente gelificante en la regeneración de plantas de Phaseolus vulgaris L. a partir de callos organogénicos

Novisel Veitía, Raúl Collado, Lourdes R. García, Idalmis Bermúdez-Caraballoso, Damaris Torres, Carlos Romero

Resumen


El genotipo, el tipo de explante y la concentración de los reguladores del crecimiento se han estudiado para incrementar la eficiencia en la regeneración de plantas de Phaseolus vulgaris L. Sin embargo, los estudios sobre el efecto del agente gelificante en la inducción de brotes son escasos. Es por ello, que el presente trabajo tuvo como objetivo determinar el efecto del agente gelificante sobre la multiplicación de callos organogénicos y la regeneración de brotes de P. vulgaris var. BAT-93, BAT-304, BAT-482, Ica Pijao y CIAP 7247F. Se determinó la masa fresca de los callos (g) y en la regeneración de brotes se cuantificó el número de callos con brotes, el número de brotes por callo y el número de brotes hiperhídricos. Los resultados mostraron que el gelificante influyó en la multiplicación de los callos y regeneración de brotes en las cinco variedades. Se encontró que Ica Pijao, CIAP7247F y BAT-93, mostraron los mayores valores en la masa fresca (g) de los callos cuando se empleó agar microbiológico E. Sin embargo, `BAT-482' alcanzó el mayor valor de masa fresca de los callos en medio de cultivo endurecido con gelrite. Los callos de `BAT-304' presentaron valores de masa fresca similares en los dos tratamientos. En la regeneración las variedades `BAT-93' y `CIAP 7247F' mostraron los mayores valores en el número de callos con brotes y brotes por callo en medio de cultivo solidificado con gelrite. No obstante, en este tratamiento hubo mayor número de brotes hiperhídricos independientemente del cultivar.

 

Palabra clave: agar, cultivo in vitro, frijol común, gelrite.


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Arellano, J, Fuentes SI, Castillo-España P, Hernández G (2009) Regeneration of different cultivars of common bean (Phaseolus vulgaris L.) via indirect organogenesis. Plant Cell. Tiss. Organ Cult. 96:1-11

Dillen, W, DE Clercq J, Goosens A, Van Montagu M, Agenon G (1997) Agrobacterium mediated transformation of Phaseolus acutifolius A. gray. Theor. Appl. Genet. 94:151-158

Gamborg, OL, Miller RA, Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Exp. Cell. Res. 50: 151-158

García, L, R Collado, Bermúdez-Caraballosos I, Veitía N, Torres D, Romero C (2008) Regeneración de plantas via organogenesis directa en Phaseolus vulgaris L. Biotecnología Vegetal 8(2):109-114

Guidolin, F (2003) Regeneraçao de plantas de Phaseolus vulgaris L. a partir de calos e transformaçao genetico Agrobacterium. Tesis en opción al grado de Doctor en Ciencias. PIRACICABA, Sâo Paulo, Brazil.

Ivanova, M, van Staden J (2011) Influence of gelling agent and cytokinins on the control of hyperhydricity in Aloe Polyphylla. Plant Cell. Tiss. Organ Cult. 104(1):13-21

Jain N, Babbar SH (2002) Gum katira - a cheap gelling agent for plant tissue culture media. Plant Cell Tissue Organ Cult. 71: 223-229

Kaçar, YA, Biçen B, Varol I, Mendi YY, Serçe S, Çetiner S (2010) Gelling agent and culture vessels affect in vitro multiplication of banana plantlets. Genetics and Molecular Research 9(1): 416-424

Kadota, M, Imizu K, Hirano T (2001) Double-phase in vitro culture using sorbitol increases shoot proliferation and reduces hyperhydricity in Japanese pear. Sci. Horticulturae 89:207-215

Mohamed, MF, Coyne DP, Read PE (1993) Shoot organogenesis in callus induced from pedicel explants of common bean (Phaseolus vulgaris L.). J Am. Soc. Hortic. Sci. 118:158-162

Nairn, BJ, Furneaux RH, Stevenson TT (1995) Identification of an agar constituent responsible for hydric control in micropropagation of radiate pine. Plant Cell Tissue and Organ culture 43:1-11.

Pereira-Netto, AB, Petkowicz CLO, Cruz-Silva CTA, Gazzoni MT, Mello AFP, Silveira JLM (2007) Differential performance of marubakaido apple rootstock shoots grown in culture media containing different agar brands: dinamyc rheological analysis. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 43:356-363

Tsay H-S, Lee C-Y, Agrawal DC, Basker S (2006) Influence of ventilation closure, gelling agent and explant type on shoot bud proliferation and hyperhydricity in Scrophularia yoshimurae-a medicinal plant. Acta Horticulturae 461:243-249

Veltcheva MR, Svetleva D, Petrova SP, Perl A (2005) In vitro regeneration and genetic transformation of common bean (Phaseolus vulgaris L.)-Problems and progress. Scientia Horticulturae 107:2-10

Zambre MA, De Clercq J, Vranová E, Van Montagu M, Angenon G, Dillen W (1998) Planta regeneration from embryo-derived callus in Phaseolus vulgaris L. (common bean) and P. acutifolious A. Gray (tepary bean). Plant Cell Rep. 17:626-630




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal
está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.