Influencia del medio de cultivo en el crecimiento y desarrollo de brotes de Phaseolus vulgaris L. regenerados in vitro

Lourdes R. García, Raúl Collado, Idalmis Bermúdez-Caraballoso, Novisel Veitía, Damaris Torres, Carlos Romero

Resumen


Para utilizar la transformación genética en el mejoramiento de los cultivos es indispensable contar con protocolos de regeneración de plantas que permitan a las células transformadas poder crecer, desarrollarse y regenerar plantas. Las leguminosas en general han permanecido recalcitrantes para la regeneración in vitro sobre todo la especie Phaseolus vulgaris L. Con el objetivo de lograr el crecimiento y elongación de brotes regenerados a partir de yemas adventicias de esta especie en el cv. CIAP 7247 se estudió la influencia de varios medios de cultivo propuestos en la literatura para las especies de Phaseolus, además de varias concentraciones de AG3 y de AgNO3. Los resultados mostraron que es indispensable el AG3 y el AgNO3 en los medios de cultivo para la elongación de brotes regenerados in vitro a partir de yemas múltiples en esta variedad. Las mayores concentraciones de este regulador del crecimiento permitieron obtener brotes elongados con longitudes medias que oscilaron entre 0.94 cm y 1.30 cm.

Palabras clave: elongación, cultivo de tejidos, frijol


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Aragao FJL, Barros LMG, Brasileiro ACM, Ribeiro SG, Smith FD, Sanford JC, Faria JC, Rech EL (1996) Inheritance of foreign genes in transgenic bean (Phaseolus vulgaris L.) co-transformed via particle bombardment. Theor Appl Genet 93: 142-150

Arellano, J, Fuentes S I, Castillo-España P, Hernández G (2008) Regeneration of different cultivars of common bean (Phaseolus vulgaris L.) via indirect organogenesis. Plant Cell Tiss Organ Cult 1: 11-18

Blair, MW, Caldas GV, Avila P, Lascano C (2006) Tannin content of commercial classes of common bean. Annu Rep Bean Improv Coop 49:151–152

Capelle SC, Mok DWS, Turner JE (1983) Effects of thidiazuron on cytokinin autonomy and the metabolism of N6 adenosine in callus cultures of Phaseolus lunatus L. Plant Physiol 73: 796-802

Cruz de Carvalho MH, Van Lê B, Zully-Fodil Y, Pham Thi AT, Thanh Van KT (2000) Efficient whole plant regeneration of common bean (Phaseolus vulgaris L.) using thin-cell-layer culture and silver nitrate. Plant Science 159 (2): 223 – 232

De Clercq J, Zambre M, Van Montagu M, Dillen W. Angenon G (2002) An optimised Agrobacterium-mediated transformation procedure for Phaseolus acutifolius A Gray (Tepary bean). Plant Cell Rep. 21: 333-340

Dillen W, De Clercq J, Goznes A, Van Montagu M, Angenon G (1997) Agrobacterium-mediated transformation of Phaseolus acutifolius A Gray. Theoretical and Applied Genetics. 94 (2): 151-158

García, L, Collado-López R, Bermúdez-Caraballoso I, Veitía N, Torres D, Romero C (2008) Regeneración de plantas vía organogénesis directa en Phaseolus vulgaris L. Biotecnología Vegetal 8 (2): 109-114

Graham PH, Vance CP (2003) Legumes: importance and constraints to greater use. Plant Physiol 131: 872-877

Guidolin AF (2003) Regeneraçao de plantas de Phaseolus vulgaris L. a partir de calos e transformaçao genética via

Agrobacterium. Tesis en opción al grado de Doctor en Ciencias. PIRACICABA, Sâo Paulo, Brazil

Heinz, DJ, Mee GWP (1969) Plant differentiation from callus tissue of Saccharum spp. Crop. Science 9 (3): 346 – 348

Kanchiswamy, CN, Maffei M (2008) Callus induction and shoot regeneration of Phaseolus lunatus L. cv. Wonder Bush and cv. Pole Sieva. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 92: 239 – 242

Nagamangala KC, Maffei M (2008) Callus induction and shoot regeneration of Phaseolus lunatus L. cv. Wonder Bush and cv. Pole Sieva Plant Cell, Tissue and Organ Culture 92 (2): 239-242

Ozden-Tokatli Y, Ozudogru EA, Akcin A (2005) In vitro response of pistachio nodal explants to silver nitrate. Scientia Horticult 106: 415-426

Russell DR, Wallace KM, Bathe JH, Martinell BJ, McCabe DE (1993) Stable transformation of Phaseolus vulgaris via electric-discharge mediated particle acceleration. Plant Cell Rep 12: 165-169

Olhoft PM Flagel LE, Donovan M, Somers DA (2003) Efficient soybean transformation using hygromycin B selection in the cotyledonary-node method. Planta 216: 723-735

Tzitzikas EN, Bergervoet M, Raemakers K, Vincken JP, Lammeren AV, Visser RGF (2004) Regeneration of pea (Pisum sativum L.) by a cyclic organogenic system. Plant Cell Rep 23: 453-460

Varisai Mohamed M, Jih-Min S, Toong-Long J, Chang-Sheng W (2006) Organogenesis of Phaseolus angularis L.: high efficiency of adventitious shoot regeneration from etiolated seedlings in the presence of N6-benzylaminopurine and thidiazuron. Plant Cell Tiss Organ Cult 86: 187-199

Veltcheva MR, Svetleva DL (2005) In vitro regeneration of Phaseolus vulgaris L. via organogenesis from petiole explants. J Central European Agric 6: 53-58

Zambre M, Goossens M, Cardona C, Van Montagu M, Terryn N, Angenon G (2005) .A reproducible genetic transformation system for cultivated Phaseolus acutifolius (tepary bean) and its use to assess the role of arcelins in resistance to the Mexican bean weevil. Theor Appl Genet 110: 914-924




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.