Medio de cultivo y reguladores de crecimiento en la multiplicación in vitro Psidium guajava L.

Jorge Vilchez, Leonardo Martínez, Carlos Alvarez, Angel Albornoz, Nilca Albany, Miguel Molina, Leyanis García-Águila

Resumen


El guayabo (Psidium guajava L.) cultivar `Enana Roja Cubana EEA 18-40' tiene altos rendimientos. Para su propagación a gran escala, la micropropagación es una posible solución. El objetivo de este trabajo fue determinar el efecto de dos medios de cultivo, dos citoquininas y un análogo de brasinoesteoides (DI-31), en la multiplicación in vitro de este cultivar. Se evaluaron dos medios de cultivo (MS y WPM), tres concentraciones de bencilaminopurina (BAP) (0.5, 1.0, 1.5 mg l-1), tres de Kinetina (0.5, 1.0, 1.5 mg l-1) y dos de DI-31 (0.01 y 0.02 mg l-1). Las variables evaluadas fueron: número de brotes, número de nudos, longitud del brote y coeficiente de multiplicación. Se comprobó que el tipo de medio de cultivo influyó en la multiplicación de brotes de guayabo. El número de brotes, la longitud de los brotes y el coeficiente de multiplicación estuvieron determinados por el tipo de citoquinina y la concentración de esta añadida al medio de cultivo. Con el empleo del medio de cultivo WPM con 1 mg l-1 de BAP se obtuvieron los mayores valores de las variables evaluadas. El uso de DI-31 promovió el crecimiento de los brotes sin afectar el coeficiente de multiplicación.

Palabras clave: bencilaminopurina, DI-31, fase de multiplicación, guayabo, kinetina, micropropagación


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Referencias


Aular J, Casares M (2011) Consideraciones sobre la producción de frutas en Venezuela. Revista Brasileira de Fruticultura. Volumen Especial: 187-198

Barwale U, Kerns H, Widholm M (1986) Plant regeneration from callus culture of several soybean genotypes via embryogenesis and organogenesis. Planta 167: 473-481

Bhatt D, Dhar U (2004) Factors controlling micropropagation of Myrica esculenta buch. _ Ham. ex D. Don: a high value wild edible of Kumaun Himalaya. African Journal of Biotechnology 3 (10): 534-540

Cardoza V, (2008) Tissue culture: The manipulation of plant development. En: Stewart, CN, Wiley J (Ed). Plant biotechnology and genetic: principles, techniques, and applications, pp. 113-134. Inc. Knoxville, Tennessee

De la Fe C, Ortiz R, Jiménez M (1998) Aportes a la tecnología de micropropagación de la caña de azúcar aplicada en Cuba. II. Efecto de análogos de brasinoesteroides en la multiplicación, el enraizamiento y la adaptación de las vitroplantas. Cultivos Tropicales 19(3): 45-48

Jordán M, Casaretto J (2008) Hormonas y reguladores del crecimiento: etileno, ácido abscísico En: Squeo F, Cardemil (Eds) Fisiología vegetal brasinoesteroides, poliaminas, ácido salicílico y ácido jasmónico, pp. 2113-2123. Ediciones Universidad de La Serena, La Serena

Loh C, Rao AN (1989) Clonal propagation of guava (Psidium guajava) from seedlings and grafted plants and adventitious shoot formation in vitro. Scientia Horticulturae 39: 31-39

McCown B, Lloyd G (1981) Woody plant medium (WPM) a revised mineral formulation for micro-culture of woody plant species. HortScience 16:453

Meghwal PR, Sharma HC, Singh SK (2010) Micropropagation studies on guava. Indian Journal of Horticulture 67(4): 55-58

Mishra, M, Chandra R, Pati R, Bajpai A (2007) Micropropagation of guava (Psidium guajava L.). Acta Horticulturae 735: 155-158

Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15(3): 473-497

Ocampo F, Nuñez V (2007) Propagación in vitro de (Psidium guajava L.) mediante organogénesis directa a partir de segmentos nodales. Revista Corpoica _ Ciencia y Tecnología Agropecuaria 8(1): 22-27

Plana D, Álvarez M, Florido M, Lara R, Núñez M (2002) Efecto del Biobras-6 en la morfogénesis in vitro del tomate (Lycopersicon esculentum Mill) var. Amalia. Cultivos Tropicales 23(2): 21-25

Shah TR, Zamir J, Ali ZH, Lutfullah G (2008) In vitro regeneration of plantlets from seedlings explants of guava (Psidium guajava L.) cv. Safeda. Pakistan Journal of Botany 40(3): 1195-1200

Vento Y (Ed) (2011) Instructivo técnico para el cultivo de la guayaba. Instituto de Investigaciones en Fruticultura Tropical. Cuba. [En línea] En: http://www.innovacion.gob.sv/inventa/attachments/article /4330/index.pdf. Consultado: 07 de abril de 2013

Vilchez J, Albany N, Gómez R, García L, Agramonte D (2001) Germinación de embriones somáticos de Psidium guajava L. cv. `Enana Roja Cubana EEA 18-40' en sistemas de inmersión temporal. Biotecnología Vegetal 1(2): 67-69

Vilchez J, Albany N, Martínez L, Molina M, Pirela C, Molina M, Álvarez C, Chirinos J (2011) Multiplicación en sistemas de inmersión temporal y enraizamiento ex vitro de ocumo blanco (Xanthosoma sagittifolium (L.) Schott). Revista Colombiana de Biotecnología 13(1): 94-102




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