Efecto de la aplicación de AIA y sacarosa en el enraizamiento in vitro de las variedades Sonate y Lambada de Anthurium andraeanum Lind.

Nydia del Rivero Bautista, Daniel Agramonte, Raúl Barbón, Wilder Camacho Chiu, Felipe Jiménez-Terry

Resumen


En este estudio se determinó el efecto de diferentes concentraciones de ácido indolacético (AIA) y sacarosa sobre el enraizamiento en Anthurium andraeanum en las variedades ‘Lambada’ y ‘Sonate’ cultivadas in vitro. Explantes nodales provenientes de plántulas obtenidas in vitro se cultivaron en un medio de cultivo MS modificado en estado líquido, suplementado con 2.89 y 5.71 μM de AIA y 30 y 40 g.l-1 (p/v) de sacarosa. Las variables evaluadas fueron la altura de las plantas (cm), el número de raíces y la longitud de las raíces (cm). En la fase de enraizamiento la mejor concentración de sacarosa en el medio de cultivo fue de 40 g.l-1, observándose que el incremento en su concentración mejoró la altura de las plantas, así como el número y longitud de las raíces para las dos variedades. En ambas variedades se encontraron diferencias en el requerimiento de AIA en las variables evaluadas.

Palabras clave: Araceae, cultivo in vitro, micropropagación

Abreviaturas: ácido indolacético (AIA), ácido naftalenacético (ANA), ácido indolbutírico (IBA), 6-furfurilaminopurina (kin)


Texto completo:

PDF HTML

Referencias


Alvarez, R, Nissen SJ y Sutter EG (1989) Relationship between indole-3-acetic acid levels in apple (Mulus pumila Mill) rootstocks cultured in vitro and adventitious root formation in the presence of indole-3-butyric acid. Plant Physiol 89: 439-443

Andrade, RM y López PMC (1994) Propagación in vitro de gerbera (Gerbera jamesonii). En: Memorias del 11º Congreso Latinoamericano de Genética y XV Congreso de Fitogenética. Monterrey Nuevo León.

Atta-Alla, H, McAlister BG y van Staden J (1998) In vitro culture and establishment of Anthurium parvispathum. S. Afr. J. Bot 64(5):296-298

Blanco, M y Valverde R (2004) Micropropagación de Philodendron sp. (posiblemente P. corcovadense). Agronomía Costarricense 28(1): 39-46

Cheng, B, Peterson CM y Mitchell RJ (1992) The role of sucrose, auxin and explant source on in vitro rooting of seedling explants of Eucalyptus sideroxylon. Plant Sci. 87:207-214

de Klerk, GJ, vd Krieken W y de Jong JC (1999) The formation of adventitious roots: new concepts, new possibilities. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant 35:189–199

Díaz-Pérez, JC, Shakel KA y Sutter EG (1995) Effects of in vitro formed roots and acclimatization on water status and gas exchange of tissue cultured apple shoots. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 120:435-440

Galiba, G y Erdei L (1986) Dependence of wheat callus growth, diferentiation and mineral content on carbohydrate supply. Plant Sci. 45:65-70

Joseph, D, Martin KP, Madassery J y Phillips VJ (2003) In vitro propagation of three commercial cut flower cultivars of Anthurium andraeanum Hort. Indian J. Exp. Biol. 41:154-159

Koroch, A R, Juliani R, Juliani RH Jr y Trippi V (1997) Micropropagation and acclimatization of Hedeoma multiflorum. Plant Cell, Tiss. Org. Cult. 48:213-217

Martin, K P, Dominic J, Madassery J y Phillip VJ (2003) Direct shoot regeneration from lamina explants of two commercial cut flower cultivars of Anthurium andraeanum Hort. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 39(5): 500-504

Matsumoto, TK y Kuehnle AR (1997) Micropropagation of Anthurium. En: Bajaj, YPS (eds.). Biotechnology in agriculture and forestry. High Tech and Micropropagation VI, pp.15-29 Springer-Verlag. New York

Murashige, T y Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant. 15:473-497

Olivera, OVZ, Gutiérrez EMA, Gutiérrez EJA y Andrade RM (2000) Cultivo in vitro de gerbera (Gerbera jamesonii H. Bolus) y su aclimatación en invernadero. Bioagro 12(3):75-80

Orlikoswka, T (1992) Influence of arginine on in vitro rooting of dwarf apple rootstocks. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 31:9-14

Pawlicki, N y Welander M (1995) Influence of carbohydrate source, auxin concentration and time of exposure on adventitious rooting. Plant Sci. 106:167-176

Pierik, RLM, Jansen JL, Maasdam A y Binnendijk CM (1975) Optimalization of gerbera plantlet production from excised capitulum explants. Sci. Hort. 3: 351-357

Pierik, RLM (1976) Anthurium andraeanum plantlets produced from in vitro cultivated callus tissues. Physiol. Plant. 37:80-82

Pierik, RLM (1990) Preparación y composición del medio de cultivo. En: Cultivo in vitro de las Plantas Superiores, pp. 45-86. 3a. ed. Ed. Mundi-Prensa. Madrid.

Pospísilová, J, Tichá I, Kadlecek P, Haisel D y Plzákova S (1999) Acclimatization of micropropagated plants to ex vitro conditions. Biologia Plantarum 42(4):481-497

Puchooa, D (2005) In vitro mutation breeding of Anthurium by Gamma radiation. International Journal of Agriculture and Biology 7(1):11-20

Seelye, FJ, Burge KG y Morgan RE (2003) Acclimatizing tissue culture plants: Reducing the shock. Combined Proceedings International Plant Propagators Society, New Zealand 53:85-90

Soukup, A, Malá J, Hrubcova M, Kalal J, Votrubova O y Cvikrova M (2004) Differences in anatomical structure and lignin content of roots of pedunculate oak and wild cherry tree plantlets during acclimation. Biologia Plantarum 48(4):481-489

Vargas, ET, Mejías A, Oropeza M y de García E (2004) Plant regeneration of Anthurium andraeanum cv Rubrun. Electronic Journal of Biotechnology 7(3):282-286

Weigel, U, Horn W, y Hock B (1984) Endogenous auxin levels in terminal stem cuttings of Chrysanthemum morifolium during adventitious rooting. Physiol. Plant. 61:422-428




Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal
está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.