Ocultar
Mostrar todos
Variabilidad fenotípica en campo de plantas de Saccharum spp. híbrido cv. ‘C87-51’ regeneradas vía embriogénesis somática
Resumen
La caña de azúcar (Saccharum spp.) es un cultivo de gran importancia económica que se ha propagado por cultivo de tejidos mediante organogénesis y embriogénesis somática. La presente investigación tuvo como objetivo determinar la variabilidad fenotípica en campo de plantas de caña de azúcar cv. ‘C87-51’ obtenidas mediante embriogénesis somática en medios de cultivo líquido. Fueron plantadas en campo plantas regeneradas a partir de embriones somáticos junto a plantas propagadas vía organogénesis y de estacas que se utilizaron como control. Las evaluaciones se efectuaron a los siete meses de la plantación en caña planta y primer retoño y las variables evaluadas fueron altura del tallo, diámetro del tallo, número de tallos por plantón, número de hojas activas por tallo y Brix. Además, se describieron características morfológicas. No se encontraron plantas fuera de tipo en las poblaciones evaluadas. Los resultados demostraron que la vía de regeneración de plantas influye significativamente en el desarrollo de las plantas en condiciones de campo. La propagación de plantas de caña de azúcar cv. ‘C87-51’ por embriogénesis somática en medio de cultivo líquido solo induce variaciones fenotípicas en campo asociadas al rejuvenecimiento in vitro similares a las referidas previamente para plantas obtenidas por organogénesis y por tanto puede ser empleada como un método de propagación masiva de plantas.
Palabras clave: biorreactor, caña de azúcar, embrión somático, variación somaclonal
Referencias
Ahloowalia BS, Maretzki A (1983) Plant regeneration via somatic embryogenesis in sugarcane. Plant Cell Rep 2(1): 21-5; doi: 10.1007/BF00269228
Bernal N, Morales F, Galvez Y, Jorge I (1999) Variedades de caña de azúcar, Uso y manejo. Publicaciones Imago, Ciudad de La Habana; ISBN: 959-7051-10-9
Brar DS, Jain SM (1998) Somaclonal variation: mechanism and applications in crop improvement. En: Jain SM, Brar DS, Ahloowalia BS (eds) Somaclonal variation and induced mutations in crop improvement, pp.15-36. Springer Netherlands, Ámsterdam; doi: 10.1007/978-94-015-9125-6
Carrillo-Castañeda G, Guillén A, Cárdenas S (2002) Differentiation of sugarcane cultivars for green energy using microscopy and tissue culture. Biotecnología Aplicada 19 (1): 30-33
Chowdhurry M, Vasil I (1993) Molecular analysis of plants regenerated from embryogenic cultures of hybrid sugarcane cultivars (Saccharum spp.). Theor Appl Genet 86 (2): 181-188; doi:10.1007/BF00222077
Cuenya M, Garcia M, Díaz Romero C, Romero E (2007) Efectos de la calidad de la semilla en los componentes del rendimiento cultural en dos variedades de caña de azúcar. Revista industrial agrícola de Tucumán 84 (1): 9-14
Devarumath, RM, Doule RB, Kawar PG, Naikebawane SB, Nerkar YS (2007) Field performance and RAPD analysis to evaluate genetic fidelity of tissue culture raised plants vis-a`-vis conventional setts derived plants of sugarcane. Sugar Tech 9(1): 17–22
Doule RB, Kawar PG, Nerkar YS, Devarumath RM (2008) Field performance of promising somaclonal variants and RAPD analysis to assess genetic variation in sugarcane (Saccharum spp.). Indian Journal of Genetic and Plant Breeding 68(3): 301–306
Etienne H, Bertrand B, Dechamp E, Maurel P, Georget F (2016) Are genetic and epigenetic instabilities of plant embryogenic cells a fatality? The experience of coffee somatic embryogenesis. Human Genet Embryol 6 (1): 136; doi:10.4172/2161-0436.1000136
Freire-Seijo M, Kosky G, Herrera IO, Reyes M (2006) Formación de callos y establecimiento de suspensiones celulares embriogénicas de caña de azúcar a partir de segmentos de hojas de plantas in vitro. Biotecnología vegetal 6 (1): 51-57
Jiménez E (1995) Propagación in vitro de la caña de azúcar (Saccharum spp. híbrido). Tesis para optar por el grado de Doctor en Ciencias Agrícolas. UCLV, Santa Clara, Cuba
Krishna H, Alizadeh M, Singh D, Singh U, Chauhan N, Eftekhari M, Sadh R K (2016) Somaclonal variations and their applications in horticultural crops improvement. 3 Biotech 6 (1): 54; doi:10.1007/s13205-016-0389-7
Lal Nand (1996) Comparative field performance of micropropagated plant of sugarcane. Indian Journal of Sugarcane Technology 11(1): 29-31
Lavanya AR, Muthukumar M, Muthukrishnan S, Kumaresan V, Senthil T, Kumar M, Vijaya V, Rao MV (2016) Effect of plant growth regulators and additives on indirect organogenesis of Simarouba glauca. En: Anis M, Ahmad N (eds) Plant Tissue Culture: propagation, conservation and crop improvement, pp. 71-82, Springer, Dordrecht; ISBN: 978-981-10-1916-6
Layla AZ (2003) Sugar cane production. Patent EP1007629 B1, 24/09/2003
Lorenzo JC, Ojeda E, Espinosa A, Borroto C (2001) Field performance of temporary immersion bioreactor derived sugarcane plant. Biol Plant 37 (6): 803-806; doi:10.1007/s11627-001-0133-8
Maximova SN, Young A, Pishak S, Guiltinan Mark J (2008) Field performance of Theobroma cacao L. plants propagated via somatic embryogenesis. In Vitro Cell Dev Biol-Plant (2008) 44: 487; doi:10.1007/s11627-008-9130-5
Merkle SA, Parrot WA, Flinn BS (1995) Morphogenic aspects of somatic embryogenesis. En: Thorpe TA (ed) In vitro embryogenesis in plants, pp. 155–203. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht; doi: 10.1007-978-94-011-0485-2_5-1
Moore LS, Stolovicki E, Braun E (2013) Population dynamics of metastable growth-rate phenotypes. PLoS ONE 8(12): 1671; doi:10.1371/journal.pone.0081671
Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 15: 473–497
Nieves N, Zambrano Y, Tapia R, Cid M, Pina D, Castillo R (2003) Field performance of artificial seed-derived sugarcane plants. Plant Cell and Organ Culture 75: 279–282
Pérez J (1998) Variación somaclonal. En: Pérez Ponce JN (ed) Propagación y mejora genética de plantas por biotecnologia, pp.105-121. IBP, Santa Clara; ISBN: 959-7122-02-2
Saini Navinder, Saini ML, Jain RK (2004) Large-scale production, field performance and RAPD analysis of micropropagatd sugarcane plants. Indian J Genet 64(2): 102-107
Sandhu S, Gosal S, Thind K, Uppal S, Sharma B, Meeta M, Singh K, Cheema G (2008) Field performance of micropropagated plants and potential of seed cane for stalk yield and quality in sugarcane. Sugar Tech 11: 34–38
Sobhakumari V P (2012) Assessment of somaclonal variation in sugarcane. African Journal of Biotechnology 11(87): 15303-15309; doi: 10.5897/AJB12.1627
Sood Neeru, Gupta Piyush K, Srivastava RK, Gosal SS (2006) Comparative studies on field performance of micropropagated and conventionally propagated sugarcane plants. Plant Tissue Cult. & Biotech 16(1): 25-29; doi: 10.3329/ptcb.v16i1.1102
Suprasanna P, Patade VY, Desai NS, Devarumath RM, Kawar PG, Pagariya MC, Ganapathi A, Manickavasagam M, Babu KH (2011) Biotechnological Developments in sugarcane improvement: an Overview. Sugar Tech 13 (4): 13 (4); 322-335; doi: 10.1007/s12355-011-0103-3
Suprasanna, P, Desai NS, Choudhari Rupali S, Bapat VA (2007) RAPD markers for assessing culture induced variation in somatic embryogenesis-derived plants of sugarcane (Saccharum officinarum L.). Sugar Tech 9(4): 284–289
Wendling I, Trueman SJ, Xavier A (2014) Maturation and related aspects in clonal forestry—part II: reinvigoration, rejuvenation and juvenility maintenance. New Forests 45: 473-486; doi:10.1007/s11056-014-9415-y
Copyright (c) 2017 Biotecnología Vegetal
Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.