Punta morada de la papa, Marchitez letal de la palma aceitera y Síndrome de cuello virado de la papaya: enfermedades asociadas a fitoplasmas en Ecuador
Resumen
Los fitoplasmas son bacterias sin pared celular limitadas al floema en plantas superiores. Las enfermedades asociadas a fitoplasmas, en el pasado, han sido poco frecuentes y severas en el Ecuador. Sin embargo, por efectos del cambio climático, su importancia se ha incrementado en un corto tiempo. Esta investigación tuvo el objetivo de detectar fitoplasmas mediante la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) anidada, en plantas de papa (Solanum tuberosum), palma aceitera (Elaeis guineensis) y papaya (Carica papaya). Amplicones del tamaño esperado para fitoplasma fueron obtenidos en el 50% de las muestras con síndrome de cuello virado de la papaya, 38% de plantas con sintomatología de punta morada de la papa y todas las muestras con marchitez letal de la palma aceitera. Punta morada ha ido incrementándose en incidencia y severidad, y existe alto riesgo de contaminación de la enfermedad en zonas de producción de semilla al centro-sur del país. En papa los resultados de este estudio están relacionados con Candidatus Phytoplasma sp. subgrupo 16SrI. La Marchitez letal continúa siendo una seria amenaza para el cultivo de palma aceitera. En papaya, miembros del 16SrXIII-E producen sintomatología similar a la informada en el presente trabajo.
Palabras clave: Candidatus Phytoplasma, producción de plantas, PCR-anidada
Palabras clave
Referencias
Alvarez E, Mejia J, Contaldo N, Paltrinieri S, Duduk B, Bertaccini A (2014) 'Candidatus phytoplasma asteris' strains associated with oil palm lethal wilt in Colombia. Plant Dis 98(3):311-8; doi: 10.1094/PDIS-12-12-1182-RE
Asipuela-Haro R, Torres A, Martínez-Rivero M (2017) Transmisión de la enfermedad marchitez sorpresiva en palma aceitera por Lincus curvatus Campos & Roelly Macropygium reticulare Fabricius (Hemiptera: Pentatomidae). Revista de Protección Vegetal 32(2): 1-9
Baer N, Morillo E, Bernal G (2013) Detección del agente causal de la marchitez letal en plantaciones comerciales de palma aceitera en el Ecuador mediante técnicas de PCR y meta genómica. Disponible en: http://ciencia.espe.edu.ec/wp-content/uploads/2013/05/VID94.pdf. Consultado 26/03/2016
Brown SE, Been BO, McLaughlin W (2006) Detection and variability of the lethal yellowing group (16Sr IV) phytoplasmas in the Cedusa sp. (Hemiptera: Auchenorrhyncha: Derbidae) in Jamaica. Ann Appl Biol 149(1):53-62; doi: 10.1111/j.1744-7348.2006.00072.x
Caicedo J, Crizon M, Pozo A, Cevallos A, Simbana L, Rivera L, Arahana V (2015) First report of 'Candidatus phytoplasma aurantifolia' (16SrII) associated with potato purple top in San Gabriel-Carchi, Ecuador. New Disease Reports 32:20; doi: 10.5197/j.2044-0588.2015.032.020
Castillo C, Paltrinieri S, Bustamante J, Bertaccini A (2018) Detection and molecular characterization of a 16SrI-F phytoplasma in potato showing purple top disease in Ecuador. Australasian Plant Pathology 47(3): 311-315; doi: 10.1007/s13313-018-0557-9
Colombo C, Second G, Valle T, Charrier A (1998) Genetic diversity characterization of cassava cultivars (Manihot esculenta Crantz). I) RAPD markers. Genetics and Molecular Biology 21(1): 105-113; doi: 10.1590/S1415-47571998000100018
Crosslin JM, Vandemark GJ, Munyaneza JE (2006) Development of a real-time, quantitative PCR for detection of the Columbia basin potato purple top phytoplasma in plants and beet leafhoppers. Plant Dis 90(5): 663-667; doi: 10.1094/PD-90-0663
Ferreira ME, Grattapaglia D (1998) Introducción al uso de marcadores moleculares en el analisis genético. Embrapa. Disponible en: http://livimagens.sct.embrapa.br/amostras/00064700.pdf. Consultado 04/05/2016
Goodfellow M, Stackebrandt E (1991) Nucleic acid techniques in bacterial systematics. Wiley, New York; doi: abs/10.1002/jobm.3620310616
Hodgetts J, Chuquillangui C, Muller G, Arocha Y, Gamarra D, Pinillos O, Velit E, Lozada P, Boa E, Boonham N (2009) Surveys reveal the occurrence of phytoplasmas in plants at different geographical locations in Peru. Ann Appl Biol 155(1): 15-27; doi: 10.1111/j.1744-7348.2009.00316.x
Hosseini P, Bahar M, Madani G, Zirak L (2011a) Molecular characterization of a phytoplasma associated with potato witches’‐broom disease in Iran. J Phytopathol 159(2): 120-123; doi: 10.1111/j.1439-0434.2010.01732.x
Hosseini P, Bahar M, Madani G, Zirak L (2011b) Molecular characterization of phytoplasmas associated with potato purple top disease in Iran. J Phytopathol 159(4): 241-6; doi: 10.1111/j.1439-0434.2010.01757.x
Howard FW, Norris RC, Thomas DL (1983) Evidence of transmission of palm lethal yellowing agent by a planthopper, Myndus crudus (Homoptera, Cixiidae). Trop Agric 60(3): 168-171
Ikten C, Ustun R, Catal M, Yol E, Uzun B (2016) Multiplex real-time qPCR assay for simultaneous and sensitive detection of phytoplasmas in sesame plants and insect vectors. Plos One 11(5): e0155891; doi: 10.1371/journal.pone.0155891
INIAP (2018) INIAP ejecuta un plan emergente frente a la presencia de Punta Morada de la Papa en Ecuador. Disponible en: http://www.iniap.gob.ec/pruebav3/iniap-ejecuta-un-plan-emergente-frente-a-la-presencia-de-punta-morada-de-la-papa-en-ecuador/. Consultado 28/07/2018
Jones P, Arocha Y, Antesana O, Montellano E, Franco P (2005) ‘Brotes grandes’ (big bud) of potato: A new disease associated with a 16SrI‐B subgroup phytoplasma in Bolivia. Plant Pathol 54(2): 234; doi: 10.1111/j.1365-3059.2005.01137.x
Josic D, Kuzmanović S, Stojanović S, Aleksić G, Pavlović S, Starović M (2010) Detection of XIIA phytoplasma group on cultivar Župljanka in Župa vineyard region by RFLP analysis of 16s rDNA sequences. Genetika 42(1): 145-153; doi: 10.2298/gensr 1001145J
Lee IM, Hammond RW, Davis RE, Gundersen DE (1993) Universal amplification and analysis of pathogen 16s RDNA for classification and identification of mycoplasma-like organisms. Phytopathology 83(8): 834-842; doi: 10.1094/Phyto-83-834
Lee I, Bottner KD, Munyaneza JE, Secor GA, Gudmestad NC (2004) Clover proliferation group (16SrVI) subgroup A (16SrVI-A) phytoplasma is a probable causal agent of potato purple top disease in Washington and Oregon. Plant Dis 88(4): 429; doi: 10.1094/PDIS.2004.88.4.429B
Lee I, Bottner KD, Secor G, Rivera-Varas V (2006) 'Candidatus Phytoplasma americanum' a phytoplasma associated with a potato purple top wilt disease complex. Int J Syst Evol Microbiol 56: 1593-1597; doi: 10.1099/ijs.0.64251-0
Lee I, Gundersen-Rindal DE, Davis RE, Bartoszyk IM (1998) Revised classification scheme of phytoplasmas based on RFLP analyses of 16S rRNA and ribosomal protein gene sequences. Int J Syst Evol Microbiol 48(4): 1153-1169; doi: 10.1099/00207713-48-4-1153
McCoy RE, Caudwell A, Chang CJ, Chen TA, Chiykowski LN, Cousin MT, Dale JL, de Leeuw G, Golino DA, Hackett KJ (1989) Plant diseases associated with mycoplasma-like organisms. En: Whitcomb RF, Tulley JG (eds). The mycoplasmas volume V, spiroplasmas, acheloplasmas and mycoplasmas of plants and arthropods, pp. 545–640. Academic Press, San Diego; ISBN: 9780323143554
Mejía JF, Contaldo N, Paltrinieri S, Pardo JM, Ros CA, Alvarez E, Bertaccini A (2011) Molecular detection and identification of group 16SrV and 16SrXII phytoplasmas associated with potatoes in Colombia. Bulletin of Insectology 64(Supplement): 97-98
Melo L, Silva E, Flores D, Ventura J, Costa H, Bedendo I (2013) A phytoplasma representative of a new subgroup, 16SrXIII-E, associated with papaya apical curl necrosis. Eur J Plant Pathol 137(3): 445-450; doi: 10.1007/s10658-013-0267-7
Morillo E, Miño GM (2011) Marcadores Molecµlares en Biotecnología Agrícola: Manual de Técnicas y Procedimientos en INIAP. Disponible en: http://repositorio.iniap.gob.ec/handle/41000/848. Consultado 21/03/2017
Munyaneza JE, Crosslin JM, Upton JE (2007) Association of Bactericera cockerelli (homoptera: Psyllidae) with "zebra chip," a new potato disease in southwestern United States and Mexico. J Econ Entomol 100(3): 656-663
Munyaneza JE, Crosslin JM, Upton JE (2006) Beet leafhopper (hemiptera: Cicadellidae) transmits the columbia basin potato purple top phytoplasma to potatoes, beets, and weeds. J Econ Entomol 99(2): 268-272; doi: 10.1603/0022-0493-99.2.268
Quito-Avila DF, Alvarez RA, Ibarra MA, Martin RR (2015) Detection and partial genome sequence of a new umbra-like virus of papaya discovered in Ecuador. Eur J Plant Pathol 143(1): 199-204; doi: 10.1007/s10658-015-0675-y
Rao GP, Chaturvedi Y, Priya M, Mall S (2011) Association of a 16Sr II group phytoplasma with dieback disease of papaya in India. Bulletin of Insectology 64: S106
Schneider BU, Ahrens B, Kirkpatrick C, Seemiiller E (1993) Classification of plant-pathogenic mycoplasma-like organisms using restriction-site analysis of PCR-amplified 16s rDNA. J Gen Microbiol 139: 519-527
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