Influencia de maltosa y sacarosa en la maduración de embriones somáticos de Glycine max cv. 'Incasoy-27'

Jorge Pérez Pérez

Resumen


La embriogénesis somática en el cultivo de soya (Glycine max) tiene como limitante el bajo porcentaje de conversión a planta que se obtiene, atribuido a la presencia de embriones somáticos con morfologías anormales durante la fase de maduración. Este trabajo tuvo como objetivo determinar la influencia de maltosa y sacarosa en la maduración de embriones somáticos de soya cultivar 'Incasoy-27'. Se empleó un medio de cultivo que contenía como fuentes de carbono maltosa o sacarosa 6.0% y carbón activado. Los embriones se colocaron en cámara de crecimiento con luz solar durante ocho semanas. Se logró en presencia de la maltosa, el mayor porcentaje de embriones somáticos maduros con morfología dicotiledonal (29.75%). El empleo de la sacarosa, incrementó el número de embriones somáticos con morfologías anormales en forma de tipo trompeta, fasciados, fusionados, cotiledón rudimentario e hipocótilo largo. Estos resultados indicaron que la fuente de carbono influye en la maduración de los embriones somáticos de soya cultivar 'Incasoy-27'. Los embriones somáticos cultivados con maltosa, incrementan las morfologías de tipo dicotiledonal, monocotiledonal y policotiledonal, con desarrollo de los meristemos apical y radical.

 

Palabras clave: cultivo de tejidos, in vitro, osmótico, regeneración, soya


Palabras clave


cultivo de tejidos; in vitro; osmótico;regeneración; soya

Texto completo:

HTML PDF

Referencias


Bailey MA, Boerma HR, Parrott WA (1993) Genotype effects on proliferative embryogenesis and plant regeneration of soybean. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 29(3): 102-108; doi: 10.1007/BF02632279

Bermúdez-Caraballoso I, Blanco TS, Pérez-Pérez J, García LR, Veitía N, Collado R, Torres D, Romero C (2011) Multiplicación y germinación de embriones somáticos en las variedades cubanas de soya IS-1 e IS-27. Biotecnología Vegetal 11(1): 49-54

Fernando J, Carneiro ML, Olívio I, Appezzato-Da-Gloria B (2002) Anatomical study of somatic embryogenesis in Glycine max L. Merrill. Braz Arch Biol Technol 45(3): 277-286; doi: 10.1590/S1516-89132002000300005

He Y, Young TE, Clark KR, Kleppinger-Sparace KF, Bridges WC, Sparace SA (2011) Developmental profile of storage reserve accumulation in soybean somatic embryos. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 47(6): 725-733; doi: 10.1007/s11627-011-9375-2

Hiraga S, Minakawa H, Takahashi K, Takahashi R, Hajika M, Harada K, Ohtsubo N (2007) Evaluation of somatic embryogenesis from immature cotyledons of Japanese soybean cultivars. Plant Biotechnology 24(4): 435-440; doi: 10.5511/plantbiotechnology.24.435

Huynh HN, Lal SK, Singh SK, Prabhu KV, Talukdar A (2015) High frequency regeneration in soybean [Glycine max (L.) Merrill.] through direct somatic embryogenesis from immature cotyledons. Ind J Plant Physiol 20(3): 232-239; doi: 10.1007/s40502-015-0166-3

Huynh HN, Lal SK, Singh SK, Talukdar A, Vinod L (2017) Screening of soybean [Glycine max (L.) Merrill] genotypes for somatic embryogenesis and plant regeneration potential. Indian J Genet 77(3): 387-393; doi: 10.5958/0975-6906.2017.00052.9

Kouadio KO, Sopie YE, Oumar S, Yao AB, Tanoh K (2018) Influence of carbohydrates on callus proliferation during somatic embryogenesis in pineapple [Ananas comosus (L.) Merr. (Bromeliaceae) Var. Cayenne Smooth Cultivar CI 16]. European Scientific Journal 14 (15): 1857-¬7881; doi: 10.19044/esj.2018.v14n15p287

Kraus JE, Arduin M (1997) Manual básico de métodos em morfologia vegetal. Ed. Universidade Federal Rural do Rio de Janeiro, Seropédica, EDUR, Brazil

Mariashibu TS, Subramanyam K, Arun M, Mayavan S, Rajesh M, Theboral J, Manickavasagam M, Ganapathi A (2013) Vacuum infiltration enhances the Agrobacterium- mediated genetic transformation in Indian soybean cultivars. Acta Physiol Plant 35(1): 41-54; doi: 10.1007/s11738-012-1046-3

Mata M, Quiroz-Figueroa F, Shannon LM, Ruiz-May E (2016) The Current Status of Proteomic Studies in Somatic Embryogenesis. En: Loyola-Vargas VM, Ochoa-Alejo N (eds). Somatic Embryogenesis: Fundamental Aspects and Application, pp. 103-119. Springer International Publishing, Switzerland; doi: 10.1007/978-3-319-33705-0_7

Murashige T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 15: 473-497; doi: 10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Nishizawa K, Ishimoto M (2009) Maturation of somatic embryos a model for soybean seed development. Plant Biotechnology 26 (5): 543-550; doi:10.5511/plantbiotechnology.26.543

Pathak N, Tiwari S, Mishr MK (2017) Regeneration of plantlets from immature explants culture in Glycine max (L.) Merrill. Legume Research 40(1): 69-73; doi: 10.18805/lr.v0i0.7020

Pérez JL, Blanco TS, García L, Veitía N, Bermúdez I, Collado R, Torres D, Romero C (2012) Influencia del tipo e intensidad de luz en la formación y multiplicación de embriones somáticos de soya. Revista Colombiana de Biotecnología 14(2): 139-146

Pérez JL, García L, Veitía N, Bermúdez I, Collado R, Torres D (2017) Efecto de la morfología de los embriones somáticos en la regeneración de plantas de soya (Glycine max L. Merrill). Cultivos Tropicales 38(2): 28-35

Rahman MH, Islam R, Hossain M, Islam MS (2010) Role of sucrose, glucose and maltose on conventional potato micropropagation. Journal of Agricultural Technology 6(4): 733-739

Raza G, Singh MB, Bhalla PL (2017) In Vitro Plant Regeneration from Commercial Cultivars of Soybean. BioMed Research International, 2017, Article ID 7379693, 9 pages; doi: 10.1155/2017/7379693

Santos KGB, Mariath JE, Moço MCC, Bodanese-Zanettini MH (2006) Somatic embryogenesis from immature cotyledons of soybean (Glycine max (L.) Merr.): Ontogeny of somatic embryos. Braz Arch Biol Technol 49(1): 49-55; doi: 10.1590/S1516-89132006000100006

Sarkar M, Roy SC (2015) Influences of medium parameters on somatic embryogenesis from leaf explants of Glycyrrhiza glabra L.. Indian J Sci Res 10(1): 63-67

Schmidt MA, Tucker DM, Cahoon EB, Parrott WA (2005) Towards normalization of soybean somatic embryo maturation. Plant Cell Rep 24(7): 383-391; doi: 10.1007/s00299-005-0950-z

Souza E, Albuquerque ACS, Teichert S, Madruga L, Mendes OL (2014) Estimate of the gene flow between transgenic and non transgenic soybean cultivars. Brazilian Journal of Applied Technology for Agricultural Science, Guarapuava-PR 7(1): 97-102; doi: 10.5935/PaeT.V7.N1.11

Widoretno W, Indriyani S, Martasari C, Hakin R (2017) Effects of sugar type and concentration on Batu 55 Mandarin (Citrus reticulata Blanco.) somatic embryo maturation. AGRIVITA Journal of Agricultural Science 39(1): 100-110; doi: 10.17503/agrivita.v39i1.714

Wright MS, Launis KL, Novitzdy R, Duesiing JH, Harms CT (1991) A simple method for the recovery of multiple fertile plants from individual somatic embryos of soybean [Glycine max (L.) Merrill]. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 27(3): 153-157; doi: 10.1007/BF02632200

Yaseen M, Ahmad T, Sablok G, Standardi A, Hafiz IA (2013) Review: role of carbon sources for in vitro plant growth and development. Mol Biol Rep 40(4): 2837-2849; doi: 10.1007/s11033-012-2299-z




Copyright (c) 2019 Biotecnología Vegetal

Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu

Licencia Creative Commons
Biotecnología Vegetal
está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.