Vol.3, No. 1, 2003 
Artículo científico                                                                  Biotecnología vegetal Vol. 3, No. 1: 31-36, enero-marzo 2003

 

 

Incidencia de contaminantes microbianos en la micropropagación de la caña de azúcar

Yelenys Alvarado Capó*, Nayanci Portal González, Leyanis García Aguila, Daimí Ramírez, Yudith Martínez. *autor para correspondencia.

Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central “Marta Abreu” de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5 ½ Santa Clara, Villa Clara. Cuba. e.mail yalvarado@ibp.uclv.edu.cu

RESUMEN

En las fases de Establecimiento, Multiplicación y Enraizamiento de la micropropagación de la caña de azúcar se determinó la incidencia de contaminantes microbianos por observación visual de los recipientes de cultivo. El tipo de microorganismo presente se confirmó en observaciones al microscopio óptico. El porcentaje de contaminación por grupo microbiano fue determinado en 731 ápices en la Fase de Establecimiento, en cada subcultivo de multiplicación (hasta el séptimo) en un total de 5 225 plantas in vitro y 6 650 en la Fase de Enraizamiento. En las tres fases se constató la presencia de microorganismos contaminantes (hongos filamentosos, bacterias y levaduras) con predominio de las bacterias (13.7 – 31.6%). En la Fase de Multiplicación los porcentajes de contaminación bacteriana se incrementaron con el número de subcultivos. Los resultados indicaron la alta incidencia de contaminantes microbianos en la micropropagación de la caña de azúcar y la necesidad de prestar atención al control de la contaminación bacteriana.

Palabras clave: Bacteria, hongo filamentoso, levadura, plantas in vitro

ABSTRACT

The incidence of microbial contaminants in Establishment, Multiplication and Rooting stages of the sugarcane micropropagation was determined by visual observation of the culture vessels. The type of microorganism was confirmed in observations to the optic microscope. The percentage of contamination for microbial group was determined in 731 apexes in the Establishment stage, in each multiplication subculture (up to the seventh) in a total of 5 225 in vitro plants and 6 650 in the Rooting stage. In three stages the presence of microbial contaminants was verified (filamentous fungi, bacteria and yeasts) with prevalence of the bacteria (13.7-31.6%). In the Multiplication stage the percentages of bacterial contamination were increased with the number of subcultures. The results indicated the high incidence of microbial contaminants in sugarcane micropropagation and the necessity of paying attention to the control of the bacterial contamination.

Key words: bacteria, filamentous fungi, in vitro plants, yeast

INTRODUCCIÓN

En las biofábricas y laboratorios de investigación cubanos, tanto en la propagación de plantas in vitro por organogénesis, como en el desarrollo de procesos de embriogénesis somática, se ha presentado contaminación microbiana (Carrazana et al., 1998; Jiménez et al., 1999; Sierra et al., 2002; Folgueras et al., 2002; Acosta et al., 2002).

Los trabajos en biotecnología vegetal en Cuba con la caña de azúcar se iniciaron a finales de los años 70 y principios de los 80 (Alfonso y Capote, 1979; Maribona et al., 1983) y las investigaciones se han continuado en varias instituciones (el Centro Nacional de Investigaciones Científicas, el Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología, el Centro de Bioplantas, el Instituto Nacional de Investigaciones de la Caña de Azúcar, el Instituto de Biotecnología de las Plantas, entre otros). En 1995 se inició el programa nacional para la producción de semilla de caña de azúcar por métodos biotecnológicos en las biofábricas. Además, por mutagénesis y selección in vitro se han obtenido nuevas variedades (Pérez et al., 1998), se han desarrollado proyectos de investigación con resultados en la propagación de esta especie en sistemas de inmersión temporal (Lorenzo et al., 1998), en el empleo de la embriogénesis somática como sistema de propagación masiva, en el desarrollo de la semilla artificial (Jiménez et al., 1999; Castillo, 2001; Freire, 2001) y la transformación genética para la resistencia a insectos (Arencibia et al., 1998; Enríquez, 1999). Sin embargo, solo se tienen referencias de los estudios realizados sobre contaminación bacteriana en este cultivo por González et al. (1997) y Díaz et al. (1998) y en los mismos no se abordó la incidencia de contaminantes en las diferentes fases de la micropropagación como objetivo de trabajo.

Teniendo en cuenta la problemática planteada, este trabajo se propuso determinar la incidencia de contaminantes microbianos en poblaciones de plantas in vitro de caña de azúcar durante las fases de Establecimiento, Multiplicación y Enraizamiento de la micropropagación.

MATERIALES Y MÉTODOS

Material vegetal

Se emplearon poblaciones de plantas in vitro de caña de azúcar ( Saccharum spp. híbrido) de las (variedades: C 87-51, C 1051-73, J 60-5 y CP 52-43). Las mismas fueron sometidas a tratamiento con electroterapia (Hernández et al., 1997) así como se establecieron y propagaron según la metodología propuesta por Jiménez et al. (1997). Además, fueron diagnosticadas como libres de patógenos sistémicos del cultivo (Peralta et al., 1997). Como material vegetal de partida habían sido empleadas plantas de campo procedentes de diferentes Estaciones Territoriales de Investigación de la caña de azúcar (ETICA) y Bancos de Semillas del país.

Determinación de la incidencia de contaminantes microbianos en la micropropagación de caña de azúcar

Se determinó por observación visual de los recipientes de cultivo la incidencia de contaminantes microbianos y se calculó el porcentaje de contaminación por grupo microbiano (bacterias, hongos filamentosos y levaduras) en poblaciones de plantas in vitro en las Fases de Establecimiento, Multiplicación y Enraizamiento. Además, el tipo de microorganismo presente se confirmó al microscopio óptico (OLYMPUS) (400x y 1000x) en preparaciones directas del crecimiento microbiano sobre portaobjetos con agua destilada estéril para las bacterias y Lactofenol (Fluka) para los hongos.

En la Fase de Establecimiento, diariamente hasta el final de la misma, se evaluaron un total de 731 ápices implantados durante dos años (septiembre de 1996 - agosto de 1998) de las variedades: C 87-51 (334), C 1051-73 (378), J 60-5 (569) y CP 52-43 (170).

Para la determinación de la incidencia de contaminantes microbianos en las Fases de Multiplicación y Enraizamiento se continuó con la población de plantas in vitro de la variedad C 87-51, propagada a partir del cuarto subcultivo en la biofábrica del IBP. Se examinaron, al final de cada subcultivo, en total 11 875 plantas in vitro. De ellas, 5 225 en la Fase de Multiplicación, hasta el séptimo subcultivo y 6 650 en la Fase de Enraizamiento.

RESULTADOS Y DISCUSIÓN

En la Fase de Establecimiento de las plantas in vitro se constató la presencia de microorganismos contaminantes. Los datos de incidencia de los diferentes grupos microbianos por variedades aparecen en la figura 1.

Los contaminantes bacterianos, independientemente de la variedad, predominaron sobre los hongos filamentosos y las levaduras en las poblaciones evaluadas. En las dos variedades del tipo Cuba (C 87-51, C 1051-73) la contaminación por bacterias no sobrepasó el 16.0%, sin embargo, en las otras dos (Ja 60-5 y CP 52-43) alcanzó valores por encima del 28.0%. Autores como Taylor y Dukic (1993), Díaz et al. (1998) y Moutia y Dookun (1999) han referido en el establecimiento in vitro de la caña de azúcar porcentajes de contaminación bacteriana superiores al 20.0%.

Dentro de los grupos de microorganismos contaminantes las bacterias ocupan un lugar sobresaliente (Herman, 1996, Leifert y Cassells, 2001). Algunas especies pueden crecer en los medios de cultivo alrededor de la base de los explantes después de la aplicación de métodos de saneamiento y de los procesos de desinfección a los cuales se someten (Moutia y Dookun, 1999).

Aunque el cultivo in vitro de la caña de azúcar ha sido abordado por varios autores (Ahloowalia y Maretzki, 1983; Lee, 1987; Taylor y Dukic, 1993; Moutia y Dookun, 1999) no se encontraron referencias en la literatura consultada sobre datos de la incidencia de contaminantes bacterianos en las Fases de Multiplicación y Enraizamiento de la micropropagación de este cultivo, en investigaciones ni en su producción comercial en biofábricas.

Se observó crecimiento microbiano alrededor de la base de los ápices y colonizando el tejido vegetal, fundamentalmente sobre las superficies cortadas, tanto la superior como la inferior que se encontraba en contacto con el medio de cultivo, lo cual implicó al explante inicial como la fuente más probable de introducción de los contaminantes (Figura 2). En algunos tubos de ensayo se observaron, además, burbujas de gas dentro del medio de cultivo, cambios en su coloración y reblandecimiento del agar.

Las diferencias en los porcentajes de contaminación microbiana entre las variedades pudieran estar relacionadas con las características propias de las plantas donantes y su microbiota, las cuales provenían de Estaciones y Bancos de Semilla situados en diferentes regiones geográficas, con particularidades en los tipos de suelo, condiciones agroclimáticas y atenciones culturales a las plantaciones. La caña de azúcar soporta unamicrobiota epifita y endofita diversa (Alfonso et al., 1992; James y Olivares, 1997).

Estos resultados corroboraron el criterio de que para el establecimiento de material vegetal en condiciones in vitro se requiere de la existencia de un banco de donantes que garantice su calidad fitosanitaria (Jiménez, 1998). Todo ello unido a la calidad del trabajo humano en el tratamiento y la desinfección de los explantes pudo contribuir a los índices diferentes de contaminación.

En las Fases de Multiplicación y Enraizamiento de la población de plantas in vitro de la variedad Cuba 87-51, la incidencia de contaminantes microbianos manifestó una tendencia similar a la Fase de Establecimiento, con predominio de los porcentajes de contaminación por las bacterias sobre los hongos filamentosos y levaduras (Figuras 2 y 3). A partir del quinto subcultivo la contaminación bacteriana apareció súbitamente y alcanzó un 17.40%. En los siguientes subcultivos los porcentajes de contaminación por este grupo microbiano continuaron en ascenso.

Este comportamiento de la contaminación bacteriana ha sido registrado por otros autores (Cassells, 1991; Leifert et al., 1992; Barrett y Cassells, 1994). Es uno de los aspectos principales que hace considerar a estos contaminantes como los que ocasionan los mayores daños pues pueden permanecer latentes y su crecimiento se hace visible sobre el medio de cultivo después de mucho tiempo de que las plantas in vitro se hayan establecido y el número de plantas es alto (Cassells, 1991 y George, 1993). Según el criterio de Leifert y Cassells (2001) cualquier pequeño cambio en las condiciones del medioambiente in vitro (pH, temperatura, composición del medio de cultivo, etc.) puede hacer que los contaminantes latentes proliferen rápidamente.

La mayor parte de los contaminantes bacterianos solo fueron visibles después del tercer o quinto día de subcultivadas las plantas in vitro, lo cual, según el criterio de George (1993), se vincula con el hecho de que las condiciones del ecosistema in vitro pueden ser adversas para el crecimiento de estos microorganismos.

En estas dos fases los porcentajes de contaminación por hongos filamentosos y levaduras se mantuvieron por debajo del 3.0%. Es poco común que estos microorganismos permanezcan latentes in vitro ya que el medio para el cultivo de células y tejidos proporciona todos los nutrientes esenciales que requieren para su crecimiento (Danby et al., 1994; Leifert et al., 1994). Es importante apuntar que el análisis de la incidencia de contaminantes en las plantas in vitro se realizó en la biofábrica del Instituto de Biotecnología de las Plantas, donde se aplica un Sistema para el control y el aseguramiento de la calidad en todo el proceso productivo (Suárez y Alvarado, 1997) que incluye puntos para el control de los contaminantes introducidos en el laboratorio. El incremento sostenido de las medidas de asepsia y el entrenamiento del personal han posibilitado que los índices de contaminación se hayan encontrado por debajo del 3.0% (sin tener en cuenta las bacterias que no se cuantificaban) en los últimos cinco años (Triana, 2001). Ello constituye un ejemplo de cómo los contaminantes fungosos que no se encuentran asociados al explante inicial pueden ser prevenidos y controlados. Sin embargo, el caso de las bacterias en las biofábricas y laboratorios de investigación no ha sido tratado con suficiente profundidad. No se cuenta con registros de incidencia, principales géneros y especies contaminantes y no se incluyen dentro de las pérdidas en cada subcultivo. Además, se desconoce el efecto que los mismos pueden causar sobre las variables fundamentales que se tienen en cuenta para evaluar la eficiencia productiva de la propagación de plantas in vitro (coeficiente de multiplicación, estado fisiológico, supervivencia, etc.) y como regla general las plantas in vitro contaminadas continúan multiplicándose o se transfieren a la Fase de Aclimatización. Por otra parte, en los laboratorios de investigación a pesar de que la contaminación bacteriana tampoco se registra ni se refiere generalmente en las publicaciones científicas, su incidencia ha limitado y entorpecido investigaciones sobre embriogénesis somática, semilla artificial, propagación de especies forestales y frutales, transformación genética, etc. (González et al., 1997; Jiménez et al., 1999).

Leifert y Woodward (1998) revelaron que un índice de pérdidas no superior al 2.0% por subcultivo parece ser el mínimo requerido para garantizar una producción exitosa. El mismo no puede ser alcanzado sin la aplicación regular de prácticas de aseguramiento a la calidad y la introducción de una estrategia de control microbiológico en la producción. Teniendo en cuenta las características de las biofábricas cubanas, Aragón (1991) y Pérez y Suárez (1993), recomendaron que el índice de contaminación permisible fuera del 5.0% pero en este valor no se incluyeron los porcentajes de contaminación por bacterias.

La mayoría de los laboratorios de cultivo de tejidos vegetales se ven afectados por la presencia de contaminantes bacterianos, independientemente de las especies de plantas que sean propagadas (Reed y Tanprasert, 1995). Sin embargo, en la literatura consultada no se encontraron referencias sobre las pérdidas ocasionadas por estos microorganismos en los laboratorios o compañías comerciales.

CONCLUSIONES

- Se determinó que la contaminación microbiana tuvo una alta incidencia en la micropropagación de la caña de azúcar y que los contaminantes bacterianos predominaron sobre otros grupos microbianos (hongos filamentosos y levaduras).

- La contaminación bacteriana afectó las Fases de Establecimiento, Multiplicación y Enraizamiento de la caña de azúcar con porcentajes que se incrementaron con el número de subcultivos. Los resultados hallados en este trabajo indicaron la necesidad de atender esta problemática en el cultivo in vitro de plantas y de desarrollar estrategias para su control.

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