Ocultar
Mostrar todos
Efecto de la orientación y la longitud del cotiledón inmaduro sobre la formación de embriones somáticos en dos genotipos cubanos de soya
Resumen
En el cultivo de la soya la identificación de genotipos apropiados para la embriogénesis somática resulta de gran importancia para su posterior aplicación en programas de mejoramiento genético. Con el objetivo de determinar el efecto de la orientación y la longitud del cotiledón inmaduro sobre la formación de embriones somáticos de dos genotipos cubanos de soya (Incasoy-24 e Incasoy-35) se realizó la siguiente investigación. Se evaluaron dos orientaciones: abaxial y adaxial, así como cinco longitudes del cotiledón inmaduro: 2.0, 3.0, 4.0, 5.0 y 6.0 mm. Se incluyó como control el genotipo Williams-82. Los resultados demostraron que la orientación y la longitud del cotiledón inmaduro fueron determinantes en el número de embriones somáticos que se formaron en los genotipos cubanos evaluados. Con la orientación abaxial se obtuvo el mayor número de embriones somáticos por cotiledón. La mayor respuesta embriogénica se alcanzó cuando se emplearon cotiledones inmaduros de 4.0 mm de longitud. Estos resultados proporcionan información básica para investigaciones posteriores en este cultivo.
Palabras clave: embriogénesis somática, orientación abaxial, regeneración
Referencias
Aparecida, J, Carneiro ML, Olívio I, Appezzato B (2002) Anatomical study of somatic embryogenesis in Glycine max (L.) Merrill. Brazilian Archives of Biology and Technology 45 (3): 277-286
Bailey, MA, Boerma HR, Parrott WA (1993) Genotype effects on proliferative embryogenesis and plant regeneration of soybean. In Vitro Cellular & Developmental Biology 29: 102-108
FAO (2009) Perspectivas Alimentarias. [En línea] En: http://www.fao.org/docrep/011/ai474e/ai474e07.htm (Consulta 21 de enero de 2010)
Finer, JJ, Nagasawa A (1988) Development of an embryogenic suspension culture of soybean (Glycine max (L.) Merrill.). Plant Cell Tissue and Organ Culture 15: 125-136
Gaj, MD (2004) factors influencing somatic embryogenesis induction and plant regeneration with particular reference to Arabidopsis thaliana (L.) Heynh. Plant Growth Regulation 43: 27-47
Gamborg, OL, Miller RA, Ojima K (1968) Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Plant cell cultures 50:151-158
Griga, M (1993) Some factors affecting somatic embryogenesis efficiency in soybean (Glycine max [L.] Merrill). Biologia Plantarum 35 (2): 101-106
Hartweck, LM, Lazzeri PA, Cui D, Collins GB y Williams EG (1988) Auxin-orientation effects on somatic embryogenesis from inmature soybeans cotyledons. In Vitro Cell Dev Biol 24: 821-828
Hepher, A, Boulter ME, Harris N, Nelson RS (1988) Development of a superficial meristem during somatic embryogenesis from inmature cotyledons of soybean [Glycine max (L.) Merrill]. Ann Bot 62: 513-519
Hiraga, S, Minakawa H, Takahashi K, Takahashi R, Hajika M, Harada K, Ohtsubo N (2007) Evaluation of somatic embryogenesis from immature cotyledons of Japanese soybean cultivars. Plant Biotechnology 24: 435–440
Kim, Y, AIl T, Soon H, Ki, H., Uk, S y Joong, S (2004) Factors affecting somatic embryogenesis from immature cotyledon of soybean. J. Plant Biotechnology 6(1): 45-50
Kita, Y, Nishizawa K, Takahashi M, Kitayaman M, Ishimoto M (2007) Genetic improvement of the somatic embryogenesis and regeneration in soybean and transformation of the improved breeding lines. Plant Cell Report 26: 439-447
Ko, TS, Korban SS (2004) Enhancing the frecuency of somatic embryogenesis following Agrobacterium-mediated transformation of inmature cotyledons of soybean [Glycine max (L.) Merril.]. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 40: 552-558
Ko, TS, Lee S, Krasnyanski S, Korban SS (2003) Two critical factors are required for efficient transformation of multiple soybean cultivars: Agrobacterium strain and orientation of immature cotyledonary explant. Theoretical Applied Genetics 107:439-447
Lazzeri, PA, Hildebrand DF, Collins GB (1985) A procedure for plant regeneration from immature
cotyledon tissue of soybean. Plant Molecular Biology Reports 3:160-167
Lazzeri, PA, Hildebrand DF, Collins GB (1987) Soybean somatic embryogenesis: effects of nutritional, physical and chemical factors. Plant Cell Tissue and Organ Culture 10:197-208
Meng, Q, Zhang C, Gai, Yu D (2007). Molecular cloning, sequence characterization and tissue-special expression of six NAC-like genes in soybean [Glycine max (L.) Merril). Plant Physiology 164: 1002-1012
Murashige, T, Skoog F (1962) A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiology Plant 15: 473-497
Nishizawa, K, Ishimoto M (2009) Maturation of somatic embryos as a model for soybean seed development. Plant Biotechnology 26: 543-550
Ortiz, R, de la Fé C, Ponce M (2005) Informe de nuevas genotipos. INCASOY-35: Primera variedad de soya obtenida en Cuba a partir del empleo de técnicas de irradiación de rayos gamma de 60Co. Cultivos Tropicales 26 (2): 57
Parrott, WA, Hildebrand DF, Williams EG, Collins GB (1989) Effect of genotype on somatic embryogenesis from immature cotyledons of soybean. Plant Cell Tissue and Organ Culture 16: 15-21
Ponce, M, de la Fé C, Ortiz R, Moya C (2003) Informe de nuevas genotipos. IS-24 e IS-27: Nuevos genotipos de soya para las condiciones climáticas de Cuba. Cultivos Tropicales 24 (3): 49
Samoylov, VM, Tucker DM, Parrott WA (1998) Soybean [Glycine max (L.) Merrill] Embryogenic cultures: the role of sucrose and total nitrogen content on proliferation. In Vitro Cellular and Developmental Biology 34: 8-13
Santarém, ER, Pelissier B, Finer JJ (1997) Effect of explant orientation, pH, solidifying agent, and wounding on initiation of soybean somatic embryos. In Vitro Cell Dev Biol Plant 33:13-19
Schmidt, MA, Tucker DM, Cahoon EB, Parrot WA (2005) Towards normalization of soybean somatic embryo maturation. Plant Cell Report 24: 383-391
Yang, C, Zhao T, Yu D, Gai J (2009) Somatic embryogenesis and plant regeneration in chinese soybean (Glycine max (L.) Merr.): impacts of mannitol, abscisic acid, and explant age. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 45: 180-188
Ziv, M, Chen J (2008) The anatomy and Morphology of Tissue Cultured Plants. En: George EF, Hall MA, Jan De Klerk, G (Eds) Plant Propagation by Tissue Culture, pp. 465-477. Springer. Dordrecht
Copyright (c) 2016 Biotecnología Vegetal
Biotecnología Vegetal eISSN 2074-8647, RNPS: 2154. ISSN 1609-1841, RNPS: 0397 Editada por: Instituto de Biotecnología de las Plantas. Universidad Central Marta Abreu de Las Villas. Carretera a Camajuaní km 5.5, Santa Clara, Villa Clara, Cuba CP 54 830 Tel: 53 42200124, e-mail: info@ibp.co.cu
Biotecnología Vegetal está bajo una Licencia Creative Commons Atribución-NoComercial 4.0 Internacional.